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高温会引起植物细胞成分、细胞组织结构和新陈代谢的变化[1-2],严重时导致植物叶片萎蔫甚至死亡,是限制植物分布及生长的主要环境因子。与动物相比,植物不能移动,只能利用自身抵抗热害的能力来应对自然界中出现的高温热害,这种抵抗热害的能力就是耐热性[3]。植物的耐热性可以通过施用生长调节剂,如钙(主要为氯化钙)[4]、水杨酸[1-3]等或高温锻炼来提高。植物在非致死高温处理(即热锻炼)下可以获得耐热性[5-9],通过感知温度信号并将这些信号转导成生物化学过程来启动温度锻炼,最终导致耐热性的发展[8]。热锻炼处理能使植物叶肉细胞及叶绿体在高温下保持结构稳定[8, 10],减少活性氧积累[8],提高抗氧化酶活性,调节渗透物质积累[11],减少光抑制[12]等,从而提高植物耐热性。热锻炼能提高亚洲百合Asiatic lilies[13],灰岩皱叶报春Primula forrestii和滇北球花报春Primula denticulate ssp. sinodenticulata[10],菊花Chrysanthemum[11]等园林植物的耐热性,但针对热锻炼提高杜鹃花Rhododendron耐热性的研究迄今亦未见报道。周广等[14]通过多年对杜鹃花的引种驯化研究,发现高温热害是影响杜鹃花引种驯化和应用的主要因子。探究如何提高杜鹃花的耐热性,使其更加广泛地应用到园林中,是园林工作者亟待解决的问题。本研究以杜鹃花品种‘状元红’Rhododendron ‘Zhuangyuan Hong’生长健壮植株为试材,研究热锻炼对植物叶片解剖结构、光合作用和生理特征(包括细胞膜系统、渗透调节系统以及酶促抗氧化系统)变化的影响,揭示热胁迫下热锻炼处理对杜鹃花耐热性的影响及其作用机理,为杜鹃花的引种驯化以及园林应用提供理论依据。
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供试杜鹃花品种‘状元红’购于浙江嘉善,在陕西杨凌新天地日光温室[温度(25±1) ℃]培养,生长健壮。选取栽植于塑料盆里的大小一致的‘状元红’18盆,1株·盆-1。栽培基质为V(松针):V(泥炭土)=1:2。试验在西北农林科技大学林学院实验楼人工气候箱中进行,处理光照度约为12 000 lx,光周期14 h,相对湿度80%。花盆随机摆放,2 d浇1次水并互换位置以减少位置的影响。试验开始前所有植株在22 ℃下适应3 d,随后随机选择一半植株移到30 ℃下热锻炼处理6 d,另一半依然置于22 ℃作为对照。6 d后,将处理组和对照组植株各取6盆并分成2组,转移到重度高温(38 ℃)和极端高温(42 ℃)下进行6 d胁迫试验,并把经过热锻炼的余下的3盆转移到人工气候箱(22 ℃)培养6 d。整个试验设6个处理(表 1)。
处理 T热锻炼/℃ T热胁迫/℃ ckA 22 22 TA 30 22 ckB 22 38 TB 30 38 ckC 22 42 TC 30 42 Table 1. 6 treatments in this trial
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处理结束后选取各盆植株从顶端开始数的第3片叶,将它们迅速切成3 mm × 1 mm大小,用体积分数为4%的戊二醛溶液固定过夜,之后用磷酸缓冲液漂洗,梯度乙醇依次脱水,并进行乙酸异戊酯置换,用K-850CO2临界点干燥仪(Quorum,英国)干燥,E-1045离子溅射仪(HITACHI,日本)喷金,再用JSM-6360LV钨灯丝扫描电子显微镜(JEOL,日本)进行观察拍照,记录叶片栅栏、海绵等组织排列情况。用Nano Measure 1.2测量软件测量叶片叶肉组织厚度,并计算栅栏海绵组织比、叶片组织结构疏松度(RS)和叶片组织结构紧密度(RCT)。栅栏海绵组织比=栅栏组织厚度/海绵组织厚度×100%;叶片组织结构疏松度(RS)=海绵组织厚度/叶片厚度×100%;叶片组织结构紧密度(RCT)=栅栏组织厚度/叶片厚度×100%。
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使用LI-6400便携式光合荧光仪(LI-COR,美国)测定叶片的净光合速率(Pn),气孔导度(Gs),蒸腾速率(Ts),细胞间隙二氧化碳摩尔分数(Ci)。测定时叶室面积为6 cm2,样品室流速设为500 μmol·s-1。
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处理结束后选取植株中部叶位的叶片测定各项生理参数。称取叶片0.1 g·次-1,重复测定3次。利用过氧化氢(H2O2)测试盒(南京建成生物工程研究所,A064)测定过氧化氢质量摩尔浓度,采用硫代巴比妥酸法测定丙二醛(MDA)质量摩尔浓度。采用蒽酮比色法测定可溶性糖质量分数,试剂盒法测定可溶性蛋白质质量分数(南京建成生物工程研究所,A045),酸性茚三酮显色法测定游离脯氨酸(Pro)质量分数。并采用氮蓝四唑光化还原法测定超氧化物歧化酶(SOD)活性,愈创木酚法测定过氧化物酶(POD)活性,紫外吸收法测定过氧化氢酶(CAT)活性。
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利用Excel和IBM SPSS Statistics 19进行数据处理和方差分析,检验不同处理间的差异显著性。
1.1. 材料与处理
1.2. 解剖结构观察
1.3. 光合参数测定
1.4. 保护酶活性及可溶性物质等的测定分析
1.5. 数据分析
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叶片是植物发展进化过程中对环境改变敏感且可塑性较大的器官,环境的变化常导致叶肉栅栏组织、海绵组织等解剖结构的响应与适应。由图 1可以看出:在38 ℃热胁迫下,相比未经过热锻炼的植株,经过热锻炼处理的植株栅栏组织细胞皱缩程度较轻,排列也较整齐;海绵组织则稍显疏松。在42 ℃热胁迫下,未经热锻炼的植株叶片海绵组织皱缩严重,栅栏组织细胞皱缩,其栅状排列几不可见;经热锻炼的植株叶片栅栏组织细胞皱缩但仍保持其栅状排列,海绵组织结构则严重破坏。结果表明,经热锻炼预处理的‘状元红’植株叶片能在热胁迫下较好地保持栅栏组织结构的稳定性。
Figure 1. Mesophyll tissue anatomical structure of the leaves in 'Zhuangyuan Hong ' under each treatment
栅栏海绵组织比是栅栏组织厚度与海绵组织厚度的比值,可用叶片组织结构紧密度与组织结构疏松度的比值表示。叶片组织结构紧密度越大或组织结构疏松度越小,栅海比越大。从表 2可知,对照温度下,经热锻炼和未经热锻炼处理对叶片栅海比无显著影响。42 ℃时各处理叶片的栅海比与38 ℃时要低。而在同一热胁迫下,热锻炼组栅海比比对照组要高,在38 ℃时高24.8%,42 ℃时高31.3%。检测叶片组织结构紧密度发现,在对照温度下,热锻炼处理后叶片组织结构紧密度显著低于未经锻炼的叶片。38 ℃下热锻炼的叶片组织结构紧密度则有所增加,但差异不显著。42 ℃时热锻炼处理的叶片组织结构紧密度比未经锻炼的叶片增加了13.0%,差异显著。检测叶片组织结构疏松度发现,对照温度下,热锻炼对叶片组织结构疏松度没有显著差异。但当温度达到38 ℃和42 ℃时,热锻炼叶片组织结构疏松度值分别显著低于未经热锻炼的叶片。
处理 栅栏海绵组织比/% 叶片组织结构紧密度/% 叶片组织结构疏松度/% ckA 80.073±3.353 A 37.348±1.065 A 47.549 ± 0.907 B TA 69.917±1.449 AC 32.627±0.499 B 46.988 ± 0.583 B ckB 51.882±2.129 D 30.063±0.848 B 59.098 ± 2.041 A TB 64.747±2.435 BC 30.627±0.707 B 48.091 ± 1.380 B ckC 48.473±1.668 D 27.068±0.688 C 56.618 ± 1.196 A TC 63.656±1.285 C 30.589±0.453 B 48.491 ± 0.629 B 说明:同列不同大写字母表示任意两值之间在0.05概率水平差异显著 Table 2. Effects of heat acclimation on mesophyll structure under different temperatures
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光合作用是植物对热胁迫最为敏感的生理过程之一[15]。表 3为热锻炼对‘状元红’叶片光合作用参数的影响。由表 3可知:在对照温度下,经热锻炼的植株叶片净光合速率(Pn)高于未经锻炼的叶片,表明此时植株光合作用受到影响,但差异不显著;在同一热激水平下,经热锻炼的植株叶片净光合速率均显著高于未经锻炼的叶片。对照温度下,经热锻炼的叶气孔导度(Gs)显著高于未经锻炼的叶片;在38 ℃胁迫下经热锻炼的叶片叶气孔导度值低于未经锻炼的叶片;而在42 ℃胁迫下则是高于未经热锻炼的叶片,但差异均不显著。高温胁迫时,经热锻炼的植株叶片胞间二氧化碳摩尔分数(Ci)均低于未经锻炼的叶片,38 ℃下,两者相差了25.5%,差异显著。测定叶片蒸腾速率(Ts)值发现,对照温度下,经热锻炼的叶片蒸腾速率值显著高于未经锻炼的叶片;38 ℃下经热锻炼的叶片蒸腾速率低于未经锻炼的叶片,42 ℃下则高于未经锻炼的叶片,但差异均不显著。
处理 Pn/(μmol·m-2·s-1) Gs/(mol·m-2·s-1) Ci/(μmol·mol-1) Ts/(mmol·m-2·s-1) ckA 2.471 ± 0.133 AC 0.029 ± 0.002 BD 190.793 ± 13.258 C 0.635 ± 0.055 B TA 2.512 ± 0.247 A 0.040 ± 0.006 A 228.181 ± 10.190 B 0.913 ± 0.059 A ckB 1.521 ± 0.200 BD 0.037 ± 0.002 AB 252.698 ± 26.497 B 0.826 ± 0.049 AB TB 2.330 ± 0.130 AC 0.030 ± 0.005 BC 201.296 ± 16.634 C 0.573 ± 0.080 B ckC 0.062 ± 0.010 F 0.021 ± 0.003 BD 337.407 ± 25.947 A 0.417 ± 0.027 B TC 0.110 ± 0.008 E 0.026 ± 0.002 ACD 314.980 ± 6.492 A 0.521 ± 0.048 B 说明:同列不同大写字母表示任意两值之间在0.05概率水平差异显著 Table 3. Effects of heat acclimation on photosynthetic parameters under different temperatures
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高温影响细胞膜结构和活性氧积累,使得膜脂质过氧化,加重膜损害。从表 4可以看出,过氧化氢及MDA质量摩尔浓度变化趋势相同。在对照温度下,热锻炼对过氧化氢及MDA质量摩尔浓度的影响不显著。随着热胁迫程度的增加,过氧化氢及MDA质量摩尔浓度均减少。在38 ℃时,相比于未经锻炼的叶片,经热锻炼的叶片中过氧化氢质量摩尔浓度显著降低,MDA质量摩尔浓度变化则不显著。在42 ℃时,过氧化氢与MDA质量摩尔浓度变化均不显著。
处理 bH2O2/(mol·kg-1) bMDA/(mmol·kg-1) ckA 59.587 ± 3.945 E 0.036 ± 0.007 B TA 70.924 ± 7.977 DE 0.037 ± 0.005 B ckB 228.488 ± 6.828 A 0.054 ± 0.003 B TB 121.314 ± 7.414BCD 0.046 ± 0.002 B ckC 280.276 ± 9.703 AC 0.097 ± 0.007 A TC 233.264 ± 19.765 AB 0.083 ± 0.014 AB 说明:同列不同大写字母表示任意两值之间在0.05概率水平差异显著 Table 4. Effects of heat acclimation on molality of H2O2 and MDA under different temperatures
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热胁迫下,植物通过细胞内溶质积累完成渗透调节,调节细胞水分环境的变化[13]。由表 5可以看出:在对照温度下,经热锻炼的‘状元红’植株叶片可溶性糖、可溶性蛋白质、游离脯氨酸质量分数均高于未经锻炼的植株叶片;随着热胁迫温度上升,热锻炼组中所有可溶性物质质量分数均低于未经锻炼组。胁迫温度达38 ℃时,热锻炼对可溶性糖、可溶性蛋白质质量分数影响差异不明显,对游离脯氨酸影响显著;胁迫温度达42 ℃时,热锻炼组叶片中可溶性糖、可溶性蛋白质均低于未锻炼组,且差异显著,但游离脯胺酸质量分数差异仍不明显。
处理 w可溶性糖/(g·kg-1) w可溶性蛋白质/(g·kg-1) w游离脯氨酸/(mg·kg-1) ckA 5.21±0.56 C 3.069±0.232 B 22.047±2.353 C TA 5.38±0.43C 3.630±0.519B 22.756±2.327 C ckB 8.74±0.07B 5.719±0.516B 115.291±5.328 B TB 6.21±0.49B 3.375±0.683 B 71.060±1.693 D ckC 14.06±1.75A 13.091±0.436 A 238.044±9.924 A TC 9.63±0.28B 5.802±0.719B 198.695±15.290 AB 说明:同列不同大写字母表示任意两值之间在0.05概率水平差异显著 Table 5. Effects of heat acclimation on mass fraction of soluble sugar, soluble protein and pro under different temperatures
处理 SOD活性/(×16.67 nkat·g-1) POD活性/(×16.67 nkat·g-1·min -1) CAT活性/(×16.67 nkat·g-1·min -1) ckA 145.137 ± 10.347 B 380.339 ± 49.563 B 1 086.137 ± 98.127 A TA 191.140 ± 19.028 AB 213.361 ± 26.763 C 320.016 ± 0485 D ckB 257.455 ± 11.576 A 1 602.143 ± 182.715 AB 677.987 ± 35.843 B TB 203.359 ± 17.149 AB 355.912 ± 35.592 B 640.641 ± 0.370 B ckC 288.862 ± 6.454 A 639.578 ± 1.126 B 603.951 ± 34.782 B TC 277.837 ± 11.447 A 2 238.180 ± 4.294 A 959.962 ± 1.663 B 说明:同列不同大写字母表示任意两值之间在0.05概率水平差异显著 Table 6. Effects of heat acclimation on activity of SOD, POD and CAT under different temperatures
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热胁迫下,植物体内活性氧产生与清除的平衡被打破,活性氧积累。SOD, POD和CAT是植物体内清除活性氧的重要保护酶[14]。对照温度下,经热锻炼的叶片中SOD活性高于未经锻炼的叶片;在38 ℃和42 ℃ 2个热胁迫水平下,经热锻炼的叶片SOD活性则低于未经锻炼的叶片,但差异并不明显。POD及CAT活性与SOD变化趋势相同,对照温度下,经热锻炼的叶片中POD及CAT活性均显著低于未经锻炼的叶片;38 ℃高温下,热锻炼组叶片POD及CAT活性均较低;42 ℃高温下,热锻炼组叶片CAT活性较高但与未锻炼组叶片差异并不显著,而POD活性则高出约2.5倍,差异显著。