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大青叶为十字花科Brassicaceae菘蓝属Isatis 2年生草本植物菘蓝Isatis indigotica的干燥叶,具有清热解毒、凉血消斑的功效[1],主要含有生物碱类、黄酮类、多糖、有机酸、氨基酸等活性成分[2]。其中,靛玉红是《中华人民共和国药典》2020版(一部)中大青叶的指标成分。研究表明:大青叶中的靛蓝、靛玉红具有抗病毒、抗肿瘤等多种药理活性[3];黄酮类化合物具有抗菌、抗氧化作用[4];多糖类化合物具有一定的免疫调节作用[5];氨基酸类化合物具有体外抗内毒素作用[6]。
近年来关于菘蓝的研究集中在水分、氮素、盐胁迫等对其生长、生理的影响,鲜见光强对大青叶生长、化学成分及抗氧化活性影响的研究报道。光是影响植物生长的重要环境因素之一,能调控植物的生长、发育和形态建成[7];此外光强与植物茎、叶的生长及形态结构有密切关系,直接决定植物的生长和产量,影响植物体内次生代谢物的生物合成和积累。植物可通过调节自身形态和生理特性从而调节光合性能以适应不同环境。根据“光照-寒热药性”假说[8],大青叶性寒,推测强光照条件更适合其基原植物菘蓝的栽培。鉴于此,本研究通过设置不同光强梯度,研究了光强对菘蓝生长、药材大青叶化学成分与抗氧化活性的影响,进一步验证“光照-寒热药性”假说,以期为菘蓝栽培提供依据。
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本研究于2021年3—10月进行。2021年3月31日播种,基质为V(营养土)∶V(珍珠岩)∶V(蛭石)=5∶3∶2[9];苗高为3~5 cm时选取健康、长势均一的植株移于花盆(直径25 cm,高18 cm)中并遮光处理。选择晴朗正午,使用不同针数遮阳网搭建遮光棚,遮光棚之间留有一定间距,避免交叉遮光。根据数字式照度计将遮光度分别调整为100%全光照(无遮光)、60%全光照、20%全光照共3个处理,分别代表强、中、弱3个水平的光强,每个处理种植32盆,每盆2株,种植管理模式相同。随机排列,每周随机调换位置以减小试验误差。同年10月下旬,采收健康、完整、无病虫害的叶片。105 ℃杀青15 min,60 ℃烘干后,粉碎过60目筛,保存于药品阴凉柜(4 ℃)中备用。
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菘蓝生长旺盛期,每组随机选取10盆,测量菘蓝株高并记录叶片数,同时选取自地上部分开始第3片完全展开的成熟叶,测量叶长、叶宽、叶柄长、叶面积等植株形态性状[10]。
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Agilent EclipsePlus C18色谱柱(70 mm×2.1 mm,1.8 μm);流动相为水-甲醇,体积比为25%∶75%;柱温为30 ℃;检测波长为289 nm;流速为0.2 mL·min−1;进样量2 μL;洗脱方法为0 min 25%水,5 min 25%甲醇,检测时间共5 min,大青叶检测方法参考文献[1]。
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称取干燥至恒量的靛蓝和靛玉红对照品各2 mg,分别加N,N-二甲基甲酰胺 (DMF),制得标准品溶液质量浓度靛蓝为1.562 5~100.000 0 mg·L−1,靛玉红为0.156 25~10.000 00 mg·L−1,注入高效液相色谱仪,以峰面积积分值为纵坐标,对照品的质量浓度为横坐标,计算靛蓝和靛玉红标准曲线。
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称取大青叶粉末0.100 0 g,加入DMF 10 mL,超声提取30 min,放冷,抽滤,取滤液,再加入DMF定容至25 mL,用0.22 μm有机滤头过滤,取续滤液,得供试品溶液。精密吸取各供试品溶液2 μL,注入高效液相色谱仪测定峰面积积分值,根据标准曲线分别计算样品中靛蓝、靛玉红质量分数。
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同一供试品溶液重复进样6次,计算相对标准偏差(RSD,%),以测验精密性。同一组样品粉末重复称取6次并制备供试品溶液,分别进样并计算RSD,以测验重复性。同一供试品溶液分别于0、2、4、6、12、24 h后进样,计算RSD,以测验24 h稳定性。
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称取同一组大青叶样品6份,设置低、中、高3个梯度,分别加入一定量的靛蓝和靛玉红标准对照品,按2.3.3中操作方法制备供试品溶液,并测定靛蓝和靛玉红质量分数,分别计算回收率及RSD。
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以芦丁为对照品测定总黄酮质量分数,采用亚硝酸钠-硝酸铝比色法[11],测定510 nm波长处吸光度,通过芦丁的标准曲线计算样品中总黄酮质量分数,重复5次。
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以D(+)-无水葡萄糖为对照品测定总多糖质量分数,采用苯酚-硫酸法[12],测定490 nm波长处吸光度,通过葡萄糖标准曲线计算样品中总多糖质量分数[13],重复5次。
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以L-精氨酸为对照品测定总游离氨基酸质量分数,采用茚三酮比色法[14],测定570 nm波长处吸光度,通过精氨酸标准曲线计算样品中总游离氨基酸质量分数,重复5次。
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1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)自由基清除法常被用作评价植物提取物的抗氧化活性[15],具有简单便捷、快速灵敏的优点[16]。称取各组大青叶粉末0.200 0 g,重复3次,加入体积分数为50%的乙醇20 mL,在64 ℃下超声提取85 min,抽滤,得到大青叶提取液。用体积分数为50%的乙醇将大青叶提取液配置成0.8~8.0 g·L−1 10个等梯度的样品溶液。分别取0.1 mL样品溶液加入3.9 mL的DPPH溶液,室温下避光反应30 min,测定517 nm波长处吸光度D(517)样品;以50%乙醇代替DPPH溶液,测得的吸光度为D(517)对照;以50%乙醇代替样品溶液,测得的吸光度为D(517)空白,并分别计算清除率。以清除率为纵坐标,样品浓度为横坐标,计算标准曲线,根据标准曲线计算DPPH自由基半清除率(IC50)及RSD。
$$ I_{{\rm{C}}50}={\{D(517)_{空白}-[D(517)_{样品}-D(517)_{对照}]\}/D(517)_{空白}}\times 100\%。 $$ 其中:D(517)空白表示反应前DPPH的吸光度;D(517)样品表示反应后DPPH的吸光度;D(517)对照表示大青叶提取液的吸光度。
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数据采用Excel和SPSS 26.0进行统计与分析,结果均以平均值±标准误表示。不同处理相同指标进行Duncan多重比较,显著性水平为0.05。
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从表1可见:100%全光照组的菘蓝株高、叶长、叶宽、叶片数,均显著高于20%全光照组(P<0.05),但与60%全光照组无显著差异;其中60%全光照组的叶长、叶片数显著高于20%全光照组(P<0.05),但株高、叶宽无显著差异。随着光强降低,菘蓝叶面积逐渐减少,100%全光照组的叶面积最大,与60%全光照组和20%全光照组存在显著差异(P<0.05)。随着光强降低,菘蓝叶柄长逐渐升高,20%全光照组叶柄长最大,与100%全光照组和60%全光照组存在显著差异(P<0.05)。
表 1 不同光强处理下菘蓝的植株形态
Table 1. Morphology of I. indigotica under different light intensities
处理 株高/cm 叶长/cm 叶宽/cm 叶柄长/cm 叶片数/片 单片叶面积/cm2 100%全光照 27.30±2.82 a 25.57±1.59 a 5.97±0.74 a 4.68±0.71 c 13.20±1.23 a 75.55±10.60 a 60%全光照 26.60±2.28 ab 25.47±2.33 a 5.30±0.64 ab 5.85±1.02 b 12.50±1.27 a 56.06±12.66 b 20%全光照 24.95±1.69 b 23.27±1.61 b 4.93±0.91 b 9.01±1.27 a 10.50±1.72 b 46.93±10.51 b 说明:不同字母表示同一指标不同处理间差异显著(P<0.05) -
靛蓝和靛玉红的标准曲线方程见表2。不同光强处理下大青叶靛蓝和靛玉红质量分数见表3。靛蓝质量分数随着光强减弱而降低,100%全光照组靛蓝质量分数最高,与60%全光照组和20%全光照组差异显著(P<0.05)。但随着光强减弱,靛玉红质量分数先升高再降低,60%全光照组的靛玉红质量分数最高,与100%全光照组和20%全光照组差异显著(P<0.05),但100%全光照组与20%全光照组的靛玉红质量分数无显著差异。
表 2 靛蓝和靛玉红的标准曲线方程
Table 2. Standard curves for indigo and indirubin
活性成分 回归方程 决定系
数R2质量浓度/
(mg·L−1)靛蓝 y=53 115x−11 584.0 0.999 9 3.125 00~50.000 00 靛玉红 y=45 271x+869.3 0.999 9 0.156 25~10.000 00 说明:x为对照品的质量浓度,y为峰面积积分值 表 3 不同光强处理下大青叶靛蓝和靛玉红的质量分数
Table 3. Contents of indigo and indirubin of isatidis folium under different light intensities
处理 靛蓝/(mg·g−1) 靛玉红/(mg·g−1) 100%全光照 8.095±0.126 a 0.307±0.004 b 60%全光照 7.042±0.276 b 0.377±0.015 a 20%全光照 5.310±0.229 c 0.314±0.002 b 说明:不同字母表示同一指标不同处理间差异显著(P<0.05) 从表4可见:靛蓝在低、中、高浓度下加样回收率分别为96.604%、95.999%、95.526%,RSD为0.562%;靛玉红在低、中、高浓度下加样回收率分别为95.279%、95.793%、97.544%,RSD为1.195%。说明该方法满足检测要求。
表 4 低、中、高梯度下的加样回收率
Table 4. Recoveries at low, medium and high concentration levels
化合物
名称称样
量/g样品
量/μg对照品加
入量/μg测得
量/μg平均回
收率/%RSD/% 靛蓝 0.100 14.203 5.436 19.454 96.604 0.562 10.873 24.641 95.999 16.309 29.782 95.526 靛玉红 0.100 0.563 0.274 0.824 95.279 1.195 0.548 1.094 95.793 0.822 1.365 97.544 -
从表5可见:不同光强处理的大青叶总黄酮、总多糖质量分数随着光强减弱而降低,100%全光照组的大青叶总黄酮、总多糖质量分数均最高,与60%全光照组和20%全光照组差异显著(P<0.05)。总游离氨基酸质量分数随着光强减弱而升高,20%全光照组的总游离氨基酸质量分数最高,与60%全光照组和100%全光照组差异显著(P<0.05)。
表 5 不同光强处理下大青叶总黄酮、总多糖和总游离氨基酸的质量分数
Table 5. Contents of total flavonoids, total polysaccharides and total free amino acid of isatidis folium under different light intensities
处理 总黄酮/
(mg·g−1)总多糖/
(mg·g−1)总游离氨基
酸/(mg·g−1)100%全光照 54.01±2.88 a 13.41±0.05 a 38.81±0.71 c 60%全光照 43.87±0.27 b 7.74±0.13 b 45.59±0.47 b 20%全光照 31.09±0.93 c 5.41±0.06 c 57.53±0.68 a 说明:不同字母表示同一指标不同处理间差异显著(P<0.05) -
从表6可知:100%全光照组大青叶提取液对DPPH自由基的清除能力最强,DPPH IC50最低,60%全光照组的清除能力次之,20%全光照组的清除能力最弱。20%全光照组的DPPH IC50显著高于60%全光照组和100%全光照组(P<0.05),但60%全光照组与100%全光照组DPPH IC50无显著差异。
表 6 不同光强处理下大青叶提取物的抗氧化活性
Table 6. Antioxidant activity of isatidis folium extracts under different light intensities
处理 DPPH IC50/(g·L−1) 100%全光照 4.51±0.27 b 60%全光照 4.80±0.32 b 20%全光照 6.61±0.24 a 说明:不同字母表示不同处理间差异显著(P<0.05) -
从表7可见:大青叶总黄酮、总多糖、靛蓝之间呈正相关,其中靛蓝和总黄酮呈显著正相关(P<0.05),相关系数为0.999;总游离氨基酸与总黄酮、总多糖、靛蓝、靛玉红均呈负相关,其中总游离氨基酸与总黄酮、靛蓝呈显著负相关(P<0.05),相关系数分别为−0.998、−1.000。DPPH IC50与总黄酮、总多糖、靛蓝、靛玉红呈负相关,其中DPPH IC50与总黄酮、总游离氨基酸、靛蓝的相关系数分别达−0.955、−0.968,但均未达到显著水平;DPPH IC50与总游离氨基酸呈正相关,其相关系数达0.972,但未达到显著水平。
表 7 大青叶化学成分及抗氧化活性的相关性分析
Table 7. Correlation analysis of chemical composition and antioxidant activity for isatidis folium
项目 总黄酮 总多糖 总游离
氨基酸靛蓝 靛玉红 DPPH IC50 总黄酮 1 总多糖 0.946 1 总游离氨基酸 −0.998* −0.923 1 靛蓝 0.999* 0.930 −1.000* 1 靛玉红 0.003 −0.322 −0.067 0.049 1 DPPH IC50 −0.955 −0.807 0.972 −0.968 −0.299 1 说明:*表示显著相关(P<0.05) 从表8可见:大青叶总多糖与叶宽、叶面积呈显著正相关(P<0.05),相关系数分别为0.998、0.999;总游离氨基酸与株高呈显著负相关(P<0.05),相关系数为−0.997。
表 8 大青叶化学成分与植株形态间的相关性分析
Table 8. Correlation analysis of chemical composition and morphology for isatidis folium
项目 株高 叶长 叶宽 叶柄长 叶片数 叶面积 总黄酮 0.991 0.924 0.966 −0.986 0.984 0.959 总多糖 0.893 0.750 0.998* −0.879 0.874 0.999* 总游离氨基酸 −0.997* −0.947 −0.947 0.995 0.995 −0.938 靛蓝 0.996 0.941 0.953 −0.993 −0.993 0.944 靛玉红 0.138 0.384 −0.257 −0.168 −0.168 −0.282 说明:*表示显著相关(P<0.05)
Effects of light intensity on growth, chemical composition and antioxidant activity of Isatis indigotica
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摘要:
目的 探究光强对大青叶基原植物菘蓝Isatis indigotica生长、药材大青叶化学成分及抗氧化活性的影响,为大青叶基原植物菘蓝的人工栽培提供参考。 方法 在100%全光照、60%全光照、20%全光照下种植菘蓝,观测菘蓝生长旺盛期叶片生长情况,同时测定大青叶靛蓝、靛玉红、总黄酮、总多糖、总游离氨基酸等化学成分质量分数和抗氧化活性。 结果 菘蓝叶片生长与光强呈正相关,100%全光照组的菘蓝株高、叶长、叶宽、叶片数、叶面积均为最高;大青叶靛蓝、总黄酮、总多糖质量分数均随着光强的降低而降低,且各组间差异显著(P<0.05);靛玉红质量分数随光强的增加呈先升高后降低的趋势,60%全光照组显著高于其他处理(P<0.05),但100%全光照组与20%全光照组间差异不显著;总游离氨基酸质量分数随着光强的降低而升高。抗氧化活性与光强呈正相关,20%全光照组的1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)自由基半清除率(IC50)显著高于60%全光照组和100%全光照组(P<0.05)。 结论 100%全光照下大青叶药材产量最高,且内在品质最好,较60%和20%全光照更适合栽培。表8参39 Abstract:Objective The present study, with an exploration of the effects of light intensity on growth of Isatis indigotica, and chemical composition, antioxidant activity of isatidis folium, aims to provide reference for the artificial cultivation of I. indigotica. Method With seedlings of I. indigotica planted under 100%, 60% and 20% of full sunlight, their growth indexes were measured at the vigorous growth period, whereas chemical compounds such as indigo, indirubin, total flavonoids, total polysaccharides and total free amino acid, as well as antioxidant activity were determined after harvest. Result The growth of leaves was positively correlated with the light intensity, and the plant height, leaf length, leaf width, number of leaves, and the single leaf area in 100% of full sunlight treatment were the largest. Indigo, total flavonoids and total polysaccharides of isatidis folium were decreased with the decrease of light intensity, and there were significant differences among three groups (P<0.05). Indirubin showed a trend of increasing first and then decreasing, with that of the 60% of full sunlight treatment being the highest (P<0.05), yet no significant differences between the ones of 100% and 20% of full sunlight treatment. The total free amino acid was negatively correlated with light intensity and increased with the decrease of light intensity. The antioxidant activity was positively correlated with the light intensity and the IC50 (half maximal inhibitory concentration) for DPPH of 20% of full sunlight treatment was significantly higher than that in 60% and 100% of full sunlight treatment (P<0.05). Conclusion The 100% of full sunlight treatment was the optimum light intensity condition to achieve high yield and intrinsic quality of isatidis folium, which is more conducive to the cultivation of isatidis folium than the 60% and 20% full sunlight treatment. [Ch, 8 tab. 39 ref.] -
Key words:
- Isatis indigotica /
- isatidis folium /
- light intensity /
- indigo /
- indirubin /
- total flavonoids /
- total polysaccharides /
- total free amino acid
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表 1 不同光强处理下菘蓝的植株形态
Table 1. Morphology of I. indigotica under different light intensities
处理 株高/cm 叶长/cm 叶宽/cm 叶柄长/cm 叶片数/片 单片叶面积/cm2 100%全光照 27.30±2.82 a 25.57±1.59 a 5.97±0.74 a 4.68±0.71 c 13.20±1.23 a 75.55±10.60 a 60%全光照 26.60±2.28 ab 25.47±2.33 a 5.30±0.64 ab 5.85±1.02 b 12.50±1.27 a 56.06±12.66 b 20%全光照 24.95±1.69 b 23.27±1.61 b 4.93±0.91 b 9.01±1.27 a 10.50±1.72 b 46.93±10.51 b 说明:不同字母表示同一指标不同处理间差异显著(P<0.05) 表 2 靛蓝和靛玉红的标准曲线方程
Table 2. Standard curves for indigo and indirubin
活性成分 回归方程 决定系
数R2质量浓度/
(mg·L−1)靛蓝 y=53 115x−11 584.0 0.999 9 3.125 00~50.000 00 靛玉红 y=45 271x+869.3 0.999 9 0.156 25~10.000 00 说明:x为对照品的质量浓度,y为峰面积积分值 表 3 不同光强处理下大青叶靛蓝和靛玉红的质量分数
Table 3. Contents of indigo and indirubin of isatidis folium under different light intensities
处理 靛蓝/(mg·g−1) 靛玉红/(mg·g−1) 100%全光照 8.095±0.126 a 0.307±0.004 b 60%全光照 7.042±0.276 b 0.377±0.015 a 20%全光照 5.310±0.229 c 0.314±0.002 b 说明:不同字母表示同一指标不同处理间差异显著(P<0.05) 表 4 低、中、高梯度下的加样回收率
Table 4. Recoveries at low, medium and high concentration levels
化合物
名称称样
量/g样品
量/μg对照品加
入量/μg测得
量/μg平均回
收率/%RSD/% 靛蓝 0.100 14.203 5.436 19.454 96.604 0.562 10.873 24.641 95.999 16.309 29.782 95.526 靛玉红 0.100 0.563 0.274 0.824 95.279 1.195 0.548 1.094 95.793 0.822 1.365 97.544 表 5 不同光强处理下大青叶总黄酮、总多糖和总游离氨基酸的质量分数
Table 5. Contents of total flavonoids, total polysaccharides and total free amino acid of isatidis folium under different light intensities
处理 总黄酮/
(mg·g−1)总多糖/
(mg·g−1)总游离氨基
酸/(mg·g−1)100%全光照 54.01±2.88 a 13.41±0.05 a 38.81±0.71 c 60%全光照 43.87±0.27 b 7.74±0.13 b 45.59±0.47 b 20%全光照 31.09±0.93 c 5.41±0.06 c 57.53±0.68 a 说明:不同字母表示同一指标不同处理间差异显著(P<0.05) 表 6 不同光强处理下大青叶提取物的抗氧化活性
Table 6. Antioxidant activity of isatidis folium extracts under different light intensities
处理 DPPH IC50/(g·L−1) 100%全光照 4.51±0.27 b 60%全光照 4.80±0.32 b 20%全光照 6.61±0.24 a 说明:不同字母表示不同处理间差异显著(P<0.05) 表 7 大青叶化学成分及抗氧化活性的相关性分析
Table 7. Correlation analysis of chemical composition and antioxidant activity for isatidis folium
项目 总黄酮 总多糖 总游离
氨基酸靛蓝 靛玉红 DPPH IC50 总黄酮 1 总多糖 0.946 1 总游离氨基酸 −0.998* −0.923 1 靛蓝 0.999* 0.930 −1.000* 1 靛玉红 0.003 −0.322 −0.067 0.049 1 DPPH IC50 −0.955 −0.807 0.972 −0.968 −0.299 1 说明:*表示显著相关(P<0.05) 表 8 大青叶化学成分与植株形态间的相关性分析
Table 8. Correlation analysis of chemical composition and morphology for isatidis folium
项目 株高 叶长 叶宽 叶柄长 叶片数 叶面积 总黄酮 0.991 0.924 0.966 −0.986 0.984 0.959 总多糖 0.893 0.750 0.998* −0.879 0.874 0.999* 总游离氨基酸 −0.997* −0.947 −0.947 0.995 0.995 −0.938 靛蓝 0.996 0.941 0.953 −0.993 −0.993 0.944 靛玉红 0.138 0.384 −0.257 −0.168 −0.168 −0.282 说明:*表示显著相关(P<0.05) -
[1] 国家药典委员会. 中华人民共和国药典(一部)[M]. 北京: 中国医药科技出版社, 2020: 22 − 23. Chinese Pharmacopoeia Commission. Chinese Pharmacopoeia (Volume Ⅰ) [M]. Beijing: China Medical Science Press, 2020: 22 − 23. [2] 邓湘昱. 大青叶化学成分与质量控制方法研究[D]. 沈阳: 沈阳药科大学, 2008. DENG Xiangyu. Studies on Chemical Constituents and Quality Control Methods of Folium Isatidis [D]. Shenyang: Shenyang Pharmaceutical University, 2008. [3] 张一鸣, 黄元贞, 万会花, 等. 植物中靛蓝生物合成途径研究进展[J]. 中国中药杂志, 2020, 45(3): 491 − 496. ZHANG Yiming, HUANG Yuanzhen, WAN Huihua, et al. Advances in biosynthesis of indigo in plants [J]. China Journal of Chinese Materia Medica, 2020, 45(3): 491 − 496. [4] 高桂花. 大青叶黄酮化合物的分离鉴定和含量测定方法研究[D]. 沈阳: 沈阳药科大学, 2008. GAO Guihua. The Isolation, Identification and Quantification of Flavonoids in Folium Isatidis [D]. Shenyang: Shenyang Pharmaceutical University, 2008. [5] 曹荣安, 李朝阳, 李昌盛, 等. 超声-微波协同提取大青叶多糖及其分子特性和免疫活性研究[J]. 天然产物研究与开发, 2019, 31(2): 185 − 190, 268. CAO Rongan, LI Chaoyang, LI Changsheng, et al. Ultrasound-microwave assisted extraction, molecular properties and immunomodulatory activities of the polysaccharide from folium isatidis [J]. Natural Product Research and Development, 2019, 31(2): 185 − 190, 268. [6] WU Xiaoyun, LIU Yunhai, SHENG Wanyun, et al. Chemical constituents of Isatis indigotica [J]. Planta Medica, 1997, 63(1): 55 − 57. [7] ROZENDAAL D M A, HURTADO V H, POORTER L. Plasticity in leaf traits of 38 tropical tree species in response to light; relationships with light demand and adult stature [J]. Functional Ecology, 2006, 20(2): 207 − 216. [8] 史红专, 严晓芦, 郭巧生, 等. 中药寒热药性与其基原植物生境光照条件相关性分析[J]. 中国中药杂志, 2018, 43(10): 2032 − 2037. SHI Hongzhuan, YAN Xiaolu, GUO Qiaosheng, et al. Correlation analysis between cold and heat property of traditional Chinese medicines and light conditions of their original plants in habitat [J]. China Journal of Chinese Materia Medica, 2018, 43(10): 2032 − 2037. [9] 师进霖, 李军萍, 杜秀虹, 等. 不同基质对菘蓝幼苗生长的影响[J]. 北方园艺, 2010(6): 209 − 210. SHI Jinlin, LI Junping, DU Xiuhong, et al. Effects of different substrate on Isatis indigotica Fort. seedling growth [J]. Northern Horticulture, 2010(6): 209 − 210. [10] 陈苏丹. 菘蓝遗传多样性及其药材品质评价研究[D]. 南京: 南京农业大学, 2014. CHEN Sudan. Genetic Diversity and Quality Evaluation of Isatis indigotica Fort. [D]. Nanjing: Nanjing Agricultural University, 2014. [11] CHEN Yujie, WANG Jing, WAN Dingrong. Determination of total flavonoids in three Sedum crude drugs by UV-Vis spectrophotometry [J]. Pharmacognosy Magazine, 2010, 6: 259 − 263. [12] 辛小雪, 王雪香, 李明宇, 等. 铁皮石斛不同花期及花朵不同部位活性组分分析[J]. 浙江农林大学学报, 2019, 36(1): 200 − 205. XIN Xiaoxue, WANG Xuexiang, LI Mingyu, et al. Active components of flowers in different flowering stages and floral structures of Dendrobium officinale [J]. Journal of Zhejiang A&F University, 2019, 36(1): 200 − 205. [13] 刘冬莲. 不同生长期中菘蓝多糖和氨基酸含量变化规律研究[J]. 分子科学学报, 2010, 26(3): 199 − 202. LIU Donglian. Studies on seasonal varitation of amino acid and total polysaccharides in Isatis indigotica Fort. [J]. Journal of Molecular Science, 2010, 26(3): 199 − 202. [14] 张永芳, 张琪, 王润梅, 等. 茚三酮呈色法测定谷子种子中的游离氨基酸含量[J]. 种子, 2014, 33(1): 111 − 113, 126. ZHANG Yongfang, ZHANG Qi, WANG Runmei, et al. Determination of free amino acid content in millet seeds by ninhydrine coloration method [J]. Seed, 2014, 33(1): 111 − 113, 126. [15] 何彦峰, 王瑞楠, 张璐璐, 等. 胡芦巴叶挥发油的萃取工艺、成分分析及抗氧化和抑菌活性研究[J]. 中国中药杂志, 2020, 45(13): 3161 − 3168. HE Yanfeng, WANG Ruinan, ZHANG Lulu, et al. Extraction technology, composition analysis and antioxidant and antimicrobial activities of volatile oil from fenugreek leaves [J]. China Journal of Chinese Materia Medica, 2020, 45(13): 3161 − 3168. [16] 彭长连, 陈少薇, 林植芳, 等. 用清除有机自由基DPPH法评价植物抗氧化能力[J]. 生物化学与生物物理进展, 2000, 27(6): 658 − 661. PENG Changlian, CHEN Shaowei, LIN Zhifang, et al. Detection of antioxidative capacity in plants by scavenging organic free radical DPPH [J]. Progress in Biochemistry and Biophysics, 2000, 27(6): 658 − 661. [17] 王艺, 韦小丽. 不同光照对植物生长、生理生化和形态结构影响的研究进展[J]. 山地农业生物学报, 2010, 29(4): 353 − 359, 370. WANG Yi, WEI Xiaoli. Advance on the effects of different light environments on growth, physiological biochemistry and morphostructure of plant [J]. Journal of Mountain Agriculture and Biology, 2010, 29(4): 353 − 359, 370. [18] 张锋, 韩金龙, 朱彦威, 等. 不同倍性菘蓝林下光合特性及种植研究[J]. 中国农学通报, 2021, 37(26): 58 − 65. ZHANG Feng, HAN Jinlong, ZHU Yanwei, et al. The photosynthesis characteristics and planting of different ploids Isatis indigotica in the understory [J]. Chinese Agricultural Science Bulletin, 2021, 37(26): 58 − 65. [19] HUTCHINGS M J, de KROON H. Foraging in plants: the role of morphological plasticity in resource acquisition [J]. Advances in Ecological Research, 1994, 25: 159 − 238. [20] 徐步青, 崔永一, 郭岑, 等. 不同光照强度和培养时间下铁皮石斛类原球茎生物量、多糖和生物碱量的动态变化[J]. 中草药, 2012, 43(2): 355 − 359. XU Buqing, CUI Yongyi, GUO Cen, et al. Dynamic variation of biomass and content of polysaccharide and alkaloid in protocorm like bodies from Dendrobium officinale at different light intensities and incubation time [J]. Chinese Traditional and Herbal Drugs, 2012, 43(2): 355 − 359. [21] 沈晓霞, 盛束军, 徐建中. 环境因子对益母草总生物碱含量的影响[J]. 浙江农业学报, 2002, 14(4): 37 − 41. SHEN Xiaoxia, SHENG Shujun, XU Jianzhong. Effect of environmental factors on the total alkaloid content in Yimu Cao (Leonurus artemisia S. Y. Hu) [J]. Acta Agriculturae Zhejiangensis, 2002, 14(4): 37 − 41. [22] 林文津. 福建马蓝有效成分累积及其分子基础研究[D]. 福州: 福建农林大学, 2015. LIN Wenjin. Accumulation of Effective Components and its Molecular Basis of Baphicacanthus cusia (Nees) Bremek in Fujian Province [D]. Fuzhou: Fujian Agriculture and Forestry University, 2015. [23] 覃军, 陈奕龙, 张丹雁, 等. 不同光照条件对南大青叶(马蓝叶)中靛玉红含量的影响[J]. 安徽农业科学, 2014, 42(1): 59 − 60, 62. QIN Jun, CHEN Yilong, ZHANG Danyan, et al. Effects of different illumination intensities on indirubin content in leaves of Baphicacanthus cusia (Nees) Bremek. [J]. Journal of Anhui Agricultural Sciences, 2014, 42(1): 59 − 60, 62. [24] 潘俊倩, 佟曦然, 郭宝林. 光对植物黄酮类化合物的影响研究进展[J]. 中国中药杂志, 2016, 41(21): 3897 − 3903. PAN Junqian, TONG Xiran, GUO Baolin. Progress of effects of light on plant flavonoids [J]. China Journal of Chinese Materia Medica, 2016, 41(21): 3897 − 3903. [25] 严晓芦, 郭巧生, 史红专, 等. 光照强度对紫花地丁生长、生理及化学成分的影响[J]. 中国中药杂志, 2019, 44(6): 1119 − 1125. YAN Xiaolu, GUO Qiaosheng, SHI Hongzhuan, et al. Effects of light intensities on growth, physiological characteristic and chemical composition of Viola yedoensis [J]. China Journal of Chinese Materia Medica, 2019, 44(6): 1119 − 1125. [26] 谢小翌, 张喜春. 不同遮荫处理对蒲公英生长及总黄酮含量的影响[J]. 北京农学院学报, 2019, 34(2): 47 − 50. XIE Xiaoyi, ZHANG Xichun. Effects of shading on growth and total flavone content in Taraxacum in greenhouse culture [J]. Journal of Beijing University of Agriculture, 2019, 34(2): 47 − 50. [27] 邵尉, 姜秀梅, 曹雪原, 等. 不同光照条件、不同采收时间对铁皮石斛总多糖、还原性糖以及甘露糖含量的影响[J]. 现代中药研究与实践, 2017, 31(4): 20 − 22. SHAO Wei, JIANG Xiumei, CAO Xueyuan, et al. Effects of different light conditions and different harvest time on total polysaccharides, reducing sugar and mannose content of Dendrobium officinale [J]. Research and Practice on Chinese Medicines, 2017, 31(4): 20 − 22. [28] 李影影, 熊耀康. 光照强度与南方红豆杉初生代谢产物相关性研究[J]. 中华中医药杂志, 2018, 33(6): 2659 − 2664. Ll Yingying, XIONG Yaokang. Collection study between light intensity and primary metabolite content of Taxus mairei (Lemee et Levl. ) S. Y. Hu ex Liu. [J]. China Journal of Traditional Chinese Medicine and Pharmacy, 2018, 33(6): 2659 − 2664. [29] 吴晓红. 胁迫条件下迷迭香中氨基酸的研究[D]. 哈尔滨: 东北林业大学, 2006. WU Xiaohong. Study on Rosemarinus officinalis L. in Amino Acid under Stress [D]. Harbin: Northeast Forestry University, 2006. [30] CAO Te, NI Leyi, XIE Ping, et al. Effects of moderate ammonium enrichment on three submersed macrophytes under contrasting light availability [J]. Freshwater Biology, 2011, 56(8): 1620 − 1629. [31] MYERS J A, KITAJIMA K. Carbohydrate storage enhances seedling shade and stress tolerance in a neotropical forest [J]. Journal of Ecology, 2007, 95(2): 383 − 395. [32] BROUQUISSE R, GAUDILLERE J P, RAYMOND P. Induction of a carbon-starvation-related proteolysis in whole maize plants submitted to light/dark cycles and to extended darkness [J]. Plant Physiology, 1998, 117(4): 1281 − 1291. [33] 朱志国, 周守标, 程龙玲, 等. 光照强度对马蹄金保护酶活性和光合特性的影响[J]. 中国草地学报, 2012, 34(5): 87 − 92. ZHU Zhiguo, ZHOU Shoubiao, CHENG Longling, et al. Effects of light intensity on protective enzymes and photosynthetic characteristics of Dichondra repens [J]. Chinese Journal of Grassland, 2012, 34(5): 87 − 92. [34] 张跃进, 皮莉, 杨东风, 等. 遮荫对半夏叶片光合色素与保护酶活性的影响[J]. 西北植物学报, 2007, 27(6): 1167 − 1171. ZHANG Yuejin, PI Li, YANG Dongfeng, et al. Effect of shading on the photosynthetic pigment and protective enzyme activities in Pinellia ternata leaves [J]. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2007, 27(6): 1167 − 1171. [35] 刘新, 王梦皎, 李一鸣, 等. 光强对金银花药材性状、光合特性及抗氧化酶活性的影响[J]. 江西农业学报, 2018, 30(9): 58 − 62. LIU Xin, WANG Mengjiao, LI Yiming, et al. Effects of light intensity on medicinal characters, photosynthetic traits and antioxidative enzyme activities of Lonicera japonica [J]. Acta Agriculturae Jiangxi, 2018, 30(9): 58 − 62. [36] 王萌, 王政, 何松林, 等. 光照强度对菊花试管苗生长和抗氧化酶活性的影响[J]. 西北农林科技大学学报(自然科学版), 2020, 48(11): 71 − 76, 86. WANG Meng, WANG Zheng, HE Songlin, et al. Effect of light intensity on growth and antioxidant enzyme activities of Chrysanthemum morifolium in vitro [J]. Journal of Northwest A&F University (Natural Science Edition), 2020, 48(11): 71 − 76, 86. [37] 刘富康, 杨剑寒, 曲映红. 大青叶粗黄酮提取及其抗氧化性研究[J]. 安徽农业科学, 2019, 47(2): 150 − 152. LIU Fukang, YANG Jianhan, QU Yinghong. Extraction and antioxidant activity of crude flavonoids from folium isatidis [J]. Journal of Anhui Agricultural Sciences, 2019, 47(2): 150 − 152. [38] ZHAO Guihong, LI Tao, QU Xinyun, et al. Optimization of ultrasound-assisted extraction of indigo and indirubin from Isatis indigotica Fort. and their antioxidant capacities [J]. Food Science and Biotechnology, 2017, 26(5): 1313 − 1323. [39] 胡建业, 吉冰洁, 卫夏怡, 等. 禹白附中多糖的提取及抗氧化抗菌活性研究[J]. 河南城建学院学报, 2018, 27(6): 82 − 86. HU Jianye, JI Bingjie, WEI Xiayi, et al. Polysaccharide extraction from Rhizoma typhonii and its antioxidant and antimicrobial activities [J]. Journal of Henan University of Urban Construction, 2018, 27(6): 82 − 86. -
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