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氮输入影响滨海湿地碳循环过程的模拟研究:进展与展望

陈雅文 韩广轩 蔡延江

詹小豪, 王旭航, 叶诺楠, 等. 浙江建德典型天然次生林群落主要乔木树种空间分布格局及种间关系[J]. 浙江农林大学学报, 2021, 38(4): 659-670. DOI: 10.11833/j.issn.2095-0756.20200586
引用本文: 陈雅文, 韩广轩, 蔡延江. 氮输入影响滨海湿地碳循环过程的模拟研究:进展与展望[J]. 浙江农林大学学报, 2021, 38(5): 883-895. DOI: 10.11833/j.issn.2095-0756.20210118
ZHAN Xiaohao, WANG Xuhang, YE Nuonan, et al. Spatial distribution patterns and interspecific relationship of dominant tree species in the tree layer of typical natural secondary forest communities in Jiande, Zhejiang Province[J]. Journal of Zhejiang A&F University, 2021, 38(4): 659-670. DOI: 10.11833/j.issn.2095-0756.20200586
Citation: CHEN Yawen, HAN Guangxuan, CAI Yanjiang. Simulation research on the effects of nitrogen input on carbon cycle process in a coastal wetland: review and prospects[J]. Journal of Zhejiang A&F University, 2021, 38(5): 883-895. DOI: 10.11833/j.issn.2095-0756.20210118

氮输入影响滨海湿地碳循环过程的模拟研究:进展与展望

DOI: 10.11833/j.issn.2095-0756.20210118
基金项目: 国家自然科学基金资助项目(42071126);美丽中国项目(XDA23050202);中国科学院国际科学合作计划项目(121311KYSB20190029)
详细信息
    作者简介: 陈雅文(ORCID: 0000-0003-2071-9760),从事滨海湿地碳交换关键过程研究。E-mail: ywchen@yic.ac.cn
    通信作者: 韩广轩(ORCID: 0000-0003-2651-8599),研究员,博士,博士生导师,从事滨海湿地生态学、碳循环与碳收支、滨海湿地生态系统演变与生态修复等研究。E-mail: gxhan@yic.ac.cn
  • 中图分类号: S153

Simulation research on the effects of nitrogen input on carbon cycle process in a coastal wetland: review and prospects

  • 摘要: 滨海湿地碳循环是控制全球碳储量的关键过程之一,受近岸水体富营养化引起的氮输入影响显著。然而氮输入影响滨海湿地碳循环的过程复杂,利用碳循环模型是研究这些过程的有效手段,在全球气候变化下,评估滨海湿地碳储蓄功能具有重要意义。本研究介绍了滨海湿地碳组分在大气-植被-水体-土壤不同界面间的迁移和转化,总结了氮输入影响碳循环各阶段的规律,发现碳储蓄和碳通量对氮输入的响应受多个因素的共同作用。在此基础上,阐述了目前发展比较成熟且同时具有碳、氮、水相关模块的碳循环主流模型,以及模型为适应湿地而做出的改进及其在湿地的应用情况,为利用模型模拟氮输入影响滨海湿地生态系统碳循环的相关过程提供参考。探讨了将模型应用于湿地,应注意潮汐过程对氮输入影响等相关发展方向,同时就如何减少模型模拟的不准确性等问题展开讨论,对未来的研究方向提出展望。图1表1参126
  • 植物种群的空间分布格局是指种群在水平空间上的配置和分布状况[1],除了种群自身特性和环境条件因素与其形成密切相关外[2],种间关系也是促使其形成的主要动力之一[3],在判断植物种间关系时,生态学家们通常会运用种间联结性分析来探究物种之间的内在联系[4]。此外,生态位的重叠程度在一定程度上能够反映物种联结关系以及空间配置关系[5-6]。对植物种间关系及空间分布格局的研究,有助于认识种群与生境的相互关系、空间资源获取能力与生态适应对策,预测群落消长动态,是深入了解维持树木物种共存机制,并了解产生空间格局的过程的重要手段[7-9],对于正确认识群落的组成、功能及演替规律具有重要意义。次生林是中国森林资源的主体,它既保持着原始森林的物种组成成分与生境,又与原始森林在结构组成、林木生长、生产力、林分环境和生态功能等诸多方面有着显著的不同,原始林退化导致的次生林面积扩大将引起森林生态系统中生物多样性的下降[10]。如何恢复和保护次生林群落的物种多样性成为生态学家面临的重要问题。而对森林木本植物的空间分布格局及种间关系的研究有助于揭示群落结构的形成机制与潜在的生态学过程,对次生林的经营抚育具有一定指导意义[11]。以松林、松阔混交林和常绿阔叶林中幼龄林为主体的天然次生林是浙江省建德市的森林资源主体,主要由被过度干扰破坏的天然林地逐渐恢复、演替而来[12]。次生林中仍保有原始森林的部分物种,但不同类型次生林在群落结构、林木年龄组成、植物生产力及生境等方面都存在显著差异[13]。本研究对浙江建德的次生林群落进行每木调查,分析主要树种间的相互关系及空间分布格局特征,以增强对该区域次生林群落结构特征和空间分布格局的认识,促进区域生物多样性保护与木本植物资源的可持续利用,预测群落的演替方向并探索其驱动力来源,进而为该区域次生林群落的恢复、改造及抚育经营提供依据,更好发挥其生态社会效益。

    研究区位于浙江省建德市新安江林场(29°29′N,119°16′E),属亚热带北缘季风气候,温暖湿润,四季分明,年平均气温为16.9 ℃,最冷月平均气温为4.7 ℃,最热月平均气温为29.2 ℃,年均降水量为1 504.0 mm。据《中国植被》区划,该地区森林植被属亚热带常绿阔叶林北部亚地带,地带性植被为常绿阔叶林。主要森林植被类型有常绿阔叶林、落叶阔叶林、常绿落叶阔叶混交林、针阔混交林等[14]

    在实地踏查的基础上,在浙江建德典型常绿阔叶林、松阔混交林和松林群落中分别设置面积为100 m×100 m的样地(表1),用木桩、塑料带进行围封标记。将每块样地划分为25小块(20 m×20 m),并以此为基本单位对乔木层进行每木调查。记录样地群落类型、海拔、坡度、坡向、土壤等环境因子;记录样方中胸径≥5 cm的木本植物的基础数据,包括种名、树高、胸径、冠幅及其相对应的坐标[15-16]

    表 1  样地基本信息
    Table 1  Basic information of sample plots
    样地类型海拔/m纬度(N)经度(E)坡度/(°)坡向土壤类型地点
    常绿阔叶林172 29°40′ 119°23′44西红壤杨村桥镇徐坑村   
    松阔混交林165 29°28′ 119°12′38红壤新安江林场朱家埠林区
    松林    90 29°21′ 119°09′33红壤新安江林场朱家埠林区
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    重要值(IV)计算[17]IV=(相对多度+相对显著度+相对频度)/3×100%。

    采用Pianka重叠指数计算物种间的生态位重叠系数,公式[18]如下:

    $${O_{ik}}{\rm{ = }}\mathop \sum \limits_{j = 1}^w \left( {{P_{i\!j}}{P_{k\!j}}} \right) \div \sqrt {{{\left( {\mathop \sum \limits_{j = 1}^w {P_{i\!j}}} \right)}^2}{{\left( {\mathop \sum \limits_{j = 1}^w {P_{k\!j}}} \right)}^2}} \text{。}$$

    其中:Oik为种i和种k的生态位重叠系数[1]w为划分的资源位总数;PijPkj分别是种i和种k在资源位j中的重要值占该物种在整个资源中总重要值的比例。Oik的值域为[0,1],当2个种对群落中所有的资源都不存在共享状态时,该种对之间生态位完全不重叠,其值为0;当2个种对群落中所有资源利用完全重叠时,该种对的生态位重叠程度为1,达到最大状态。

    2.4.1   种内空间分布格局

    Ripley’s K(r)函数是进行种内空间分布格局分析的基础函数,公式如下[19]

    $$ K\left( r \right) = \frac{A}{{{n^2}}}\sum\limits_{p = 1}^n {\sum\limits_q^n {e_{pq}^{ - 1}} } {I_r}{\rm{(}}{u_{pq}}{\rm{)}}\text{。} $$

    其中:r为分析的空间尺度(m),A为样方面积(m2),n为植物种个体数,upq表示点p和点q之间的距离(m);Ir(upq)为指示函数,当upqr时,Ir(upq)=1,当upqr时,Ir(upq)=0;epq为权重值,用于边缘校正。为了更直观地解释实际的空间格局,通常用Ripley’s L(r)函数表示:

    $$L\left( r \right) = \sqrt {\frac{{K\left( r \right)}}{\text{π} }} {\rm{ - }}r\text{。}$$

    L(r)=0,种群分布类型为随机分布,对种群的聚集分布研究基于随机分布的基础,以样地中的任意一点为圆心,r为半径画圆,如果在圆中出现的个体数多于随机状态下的个体数,那么表示该种群呈现聚集分布;当圆中出现的个体数少于随机分布状态下的个体数时,该种群呈现均匀分布[20-22]。采用Monte-Carlo模拟99%置信区间,进行结果偏离随机状态的显著性检验。若L(r)值位于置信区间之上,种群呈聚集分布,L(r)值位于置信区间之下,种群呈均匀分布,L(r)值位于置信区间之内,种群呈随机分布[23]

    2.4.2   种间空间分布格局

    种间空间分布格局基础函数计算公式[24]如下:

    $${K_{12}}\left( r \right) = \frac{A}{{{n_1}{n_2}}}\sum\limits_{g = 1}^n {\sum\limits_f^n {w_{gf}^{ - 1}} } {I_r}({u_{gf}})\text{。}$$

    其中:n1n2分别为种1和种2的个体数,fg分别代表种1和种2的个体。同样,用L12(r)取代K12(r),公式为:

    $${L_{12}}\left( r \right) = \sqrt {\frac{{{K_{12}}\left( r \right)}}{\text{π} }} {\rm{ - }}r\text{。}$$

    L12(r)=0,表明2个种在r尺度下无关联;当L12(r)>0,表明两者为空间正关联;当L12(r)<0,表明两者为空间负相关。采用Monte-Carlo模拟99%置信区间,进行结果偏离随机状态的显著性检验。当L12(r)值位于置信区间之上,2个变量显著正相关;L12(r)值位于置信区间之下,2个变量显著负相关;L12(r)值位于置信区间之内,2个变量相互独立[23]。本研究根据实际样地面积,在参考同类研究及毗邻地区森林群落空间格局研究的基础上[25-26],将格局分析的尺度限定为0~25.0 m。

    2.5.1   总体联结性检验

    采用方差比率法来测定各类型次生林群落中主要树种间的总体联结性,并利用统计量W来检验总体联结是否显著,计算公式[27]如下:

    $${V_{\rm{R}}} = \frac{{\dfrac{1}{N}\displaystyle\sum\limits_{z = 1}^N {{{({T_z} - t)}^2}} }}{{\displaystyle\sum\limits_{i = 1}^S {(1 - {P_i})} }}\text{。}$$

    其中:VR为方差比率,N为样方总数,$ T_z $为样方$ z $内出现的目标物种总数;t为样方中物种的平均数,S为总物种数,Pi为物种i的频度。以VR作为不同类型次生林中主要树种总体联结性指数,在独立性零假设条件下,VR期望值为1,即当VR=1时认为种间无联结;若VR<1则表示物种间存在正联结;若VR<1则表示物种间存在负联结。对于VR偏离1的显著程度采用统计量W来验证,W=VRN,若$W{\text{<}}$${\textit{χ}}_{0.95}^2\left( N \right)$$W{\text{>}}{\textit{χ}} _{0.05}^2\left( N \right)$则说明种间总体联结性性显著,若${\textit{χ}} _{0.05}^2\left( N \right) {\text{>}}W {\text{>}} {\textit{χ}}_{0.95}^2\left( N \right)$则说明种间总体联结性不显著[28]

    2.5.2   种间联结性分析

    采用经Yates连续校正系数纠正的χ2统计量对种间联结性进行定性研究。公式[18]如下:

    $${\textit{χ} ^2} = \frac{{N{{[ad - bc - 0.5N]}^2}}}{{(a + b)(b + d)(a + c)(c + d)}}\text{。}$$

    其中,N为取样总数,$ a $为2物种均出现的样方数,bc分别为2个种单独出现的样方数,d为2物种均不出现的样方数。当$ ad-bc=0 $时,2个种相互独立;$ ad-bc{\text{>}}0 $时,2个种之间呈正联结;$ ad- $bc<0时,2个种之间呈负联结。${\textit{χ}}^{2}$<3.841时,表示种间联结性不显著;当3.841<${\textit{χ}}^{2}$<6.635时,表示种间联结性显著;当${\textit{χ}}^{2}$>6.635时,表示种间联结性极显著[17]。为避免出现分母为0无法计算分析的状况,把abcd凡是为0的都加权为1[29-30]

    2.5.3   种间相关性测定

    本研究以多度作为Spearman秩相关系数的数量指标,对种对间的线性关系做定量分析,计算公式[31]如下:

    $$r\left( {i,k} \right) = 1 - \frac{{6\displaystyle\sum\limits_{z = 1}^N {{{\left( {{x_{iz}} - {{\bar x}_i}} \right)}^2}} {{\left( {{x_{kz}} - {{\bar x}_k}} \right)}^2}}}{{{N^3} - N}}\text{。}$$

    其中,$ r\left(i,k\right) $是种$ i $和种$ k $在样方$ z $中的Spearman秩相关系数;$ N $为样方总数;$ {x}_{iz} $$ {x}_{kz} $分别是种$ i $和种$ k $在样方$ z $中的秩;$ {\bar{x}}_{i} $$ {\bar{x}}_{k} $分别是种$ i $和种$ k $在所有样方中多度的平均值。$ r\left(i,\;k\right) $的值域为[−1, 1],正值表示正相关,负值表示负相关。

    根据重要值大于5%选出各植被类型主要树种。常绿阔叶林中主要树种是青冈Cyclobalanopsis glauca、石栎Lithocarpus glaber、苦槠Castanopsis sclerophylla及木荷Schima superba等4种;松阔混交林的主要树种分别是马尾松Pinus massoniana、苦槠、杉木Cunninghamia lanceolata、檵木Loropetalum chinense、石栎等5种;松林的主要树种分别是马尾松、杉木、苦槠、化香Platycarya strobilacea、枫香Liquidambar formosana等5种。

    表2可以看出:在常绿阔叶林中,主要树种之间生态位重叠程度最高的是木荷-石栎(0.861 4)、其次是苦槠-青冈(0.615 4),最低的是苦槠-木荷(0.377 2);在松阔混交林中,重叠程度最高的是檵木-苦槠(0.801 8),其次是马尾松-石栎(0.753 1),最低的是石栎-杉木(0.340 9);在松林中,重叠程度最高的是枫香-化香(0.757 5),其次是枫香-苦槠(0.720 1),最低的是苦槠-马尾松(0.442 7)。

    表 2  不同森林类型主要树种生态位重叠数值矩阵
    Table 2  Niche overlap of dominant tree species of different forest types
    常绿阔叶林松阔混交林松林
    树种苦槠木荷青冈树种檵木苦槠马尾松石栎树种枫香化香树苦槠马尾松
    木荷0.377 2苦槠 0.801 8化香 0.757 5
    青冈0.615 40.518 2马尾松0.631 20.632 4苦槠 0.720 10.625 8
    石栎0.421 90.861 40.473 3石栎 0.451 30.458 40.753 1马尾松0.676 90.567 60.442 7
    杉木 0.393 70.521 80.646 20.340 9杉木 0.466 20.470 70.600 10.567 5
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    3.3.1   种内空间分布格局

    在所有研究样地中,主要树种在0~25.0 m的尺度内均表现为显著的聚集分布(P<0.05)(图1~3)。

    图 1  常绿阔叶林主要树种空间分布格局
    Figure 1  Spatial distribution pattern of dominant tree species in evergreen broad-leaved forest
    图 2  松阔混交林主要树种空间分布格局
    Figure 2  Spatial distribution pattern of dominant tree species in mason pine and broad-leaved mixed forest
    图 3  松林主要树种空间分布格局
    Figure 3  Spatial distribution pattern of dominant tree species in mason pine forest
    3.3.2   种间空间分布格局

    常绿阔叶林主要树种空间分布格局特征如下(图4):青冈-石栎在0~25.0 m尺度上均呈现负相关,其中6.0~10.0 m、15.0~17.0 m尺度上负相关达到显著(P<0.05);青冈-木荷在0~25.0 m尺度上均为负相关,其中8.0~14.0 m尺度范围内达到显著(P<0.05);石栎-木荷在0~25.0 m尺度上均呈现显著的正相关(P<0.05)。其他种对的空间关联性则以不显著相关为主。

    图 4  常绿阔叶林主要树种间空间分布格局图
    Figure 4  Spatial distribution pattern of dominant tree species in evergreen broad-leaved forest

    松阔混交林主要树种空间分布格局特征如下(图5):马尾松-石栎在0~25.0 m尺度上呈现正相关,10.0~25.0 m尺度内达到显著(P<0.05);苦槠-石栎在0~20.0 m尺度范围内为正相关,其中7.0~8.0 m尺度上达到显著(P<0.05),而在20.0~25.0 m尺度范围内呈现不显著负相关。其他种对的空间关联性以不显著相关或无关联为主。

    图 5  松阔混交林主要树种间空间分布格局图
    Figure 5  Spatial distribution pattern of dominant tree species in mason pine and broad-leaved mixed forest

    松林主要树种间空间分布格局特征如下(图6):马尾松-化香在0~25.0 m尺度上为负相关,其中4.0 m时达到显著(P<0.05);杉木-苦槠在0~25.0 m尺度范围内为正相关,其中15.0~25.0 m尺度上达到显著(P<0.05);杉木-化香在0~25.0 m尺度范围内为负相关,其中7.5~17.0 m尺度上达到显著(P<0.05);化香-枫香在0~25.0 m尺度范围内表现为正相关,其中12.0~13.0 m尺度上达到显著(P<0.05)。除此之外其他种对的空间关联性表现为不显著相关或无关联。

    图 6  松林主要树种间空间分布格局图
    Figure 6  Spatial distribution pattern of dominant tree species in mason pine forest
    3.4.1   总体联结性

    各类型次生林的方差比率(表3)结果表明:3种类型次生林主要树种的总体关联性均为不显著正关联。

    表 3  不同森林类型主要树种的总体关联性
    Table 3  Overall interspecific associations among dominant tree species of different forest types
    样地类型方差比率W${\; \textit{χ}^{2}_{0.95}(N)} $,${ \; \textit{χ}^{2}_{0.05}(N)} $结果
    常绿阔叶林1.38934.72214.611, 37.652不显著正关联
    松阔混交林1.39734.93014.611, 37.652不显著正关联
    松林   1.19929.96614.611, 37.652不显著正关联
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    3.4.2   种间联结性检验

    χ2检验结果表明(表4):样地中所有类型次生林的主要树种种对均呈不显著的正联结(χ2<3.841,$ ad-bc $>0)。

    表 4  不同森林类型的种间联结χ2统计量矩阵
    Table 4  Value of χ2 of different forest types
    常绿阔叶林松阔混交林松林
    树种苦槠木荷青冈树种檵木苦槠马尾松杉木树种枫香化香马尾松杉木
    木荷0.001苦槠 1.223化香 0.179
    青冈0.2300.092马尾松1.1031.103马尾松0.2301.103
    石栎0.0390.0010.230杉木 0.0010.0010.010杉木 0.0200.1790.230
    石栎 0.0890.0890.0690.110苦槠 2.2140.0690.0380.368
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    3.4.3   种间相关性分析

    图7可知:在常绿阔叶林中,呈负相关的种对有苦槠-木荷、木荷-青冈和青冈-石栎等3对,其中木荷-青冈和青冈-石栎种对的负相关达极显著(P<0.01);呈正相关的有苦槠-青冈、苦槠-石栎和木荷-石栎等3对,其中木荷-石栎种对的正相关达到极显著(P<0.01)。在松阔混交林中,呈现负相关的种对有檵木-杉木、檵木-石栎2对;其余8对均呈正相关,其中马尾松-石栎的正相关达极显著(P<0.01)。在松林中,呈现负相关的种对有枫香-杉木、化香-马尾松、化香-杉木、化香-苦槠和马尾松-苦槠等5对,其中化香-杉木的负相关达显著(P<0.05);其余5对呈正相关,其中枫香-苦槠的正相关达显著(P<0.05)。

    图 7  不同森林类型种间Spearman秩相关半矩阵图
    Figure 7  Semi-matrix of Spearman’s rank correlation coefficients of dominant tree species of different forest types

    森林在向顶级群落演替的过程中,植物种内空间分布格局一般会由聚集分布渐渐过渡为随机分布[12],而在本研究中,0~25.0 m尺度上不同类型次生林的主要树种均呈显著(P<0.05)聚集分布,这说明样地群落还未进入演替成熟期。物种自身的生物学特性是造成群落演替过程中物种聚集分布的主要原因,即相同物种对环境等条件有着相似的需求[32]。样地群落种间生态位重叠程度也能佐证其所处的演替阶段,顶级群落中树种间的生态位重叠程度一般处在较低的水平,即树种间的竞争并不活跃,这是因为经过长时间演替后,群落趋于稳定,内部树种间达到了一种相对平衡的状态[33-34],主要树种间的生态位重叠程度仍普遍较高,群落整体呈正关联,正相关种对仍有较高占比。这反映了群落中的主要树种具有相似的环境需求和生态适应性,由此造成了样地中主要树种的聚集分布。此外,种子的扩散限制和生境异质性也被认为是影响物种分布的主要因素[20],样地中主要树种的种子传播方式以重力传播为主,种子传播距离有限,多聚集在母树周围,离母树越远种子越少,这也导致了树种的聚集分布。在松林中,马尾松和杉木作为建群早期先锋种最先入侵林地,在光竞争中占据优势,对光的有效利用是形成林分空间格局的主要决定因素[35],因而马尾松和杉木与群落中其他优势树种多呈负空间关联。枫香幼树稍耐荫,所以与群落中其他优势树种多呈正空间关联。在松阔混交林中,主要树种间空间关联显著程度较低,这或许与群落中的针叶树种同群落中其他较晚发育起来的常绿阔叶树种产生了垂直分层现象有关,这种垂直分层现象能够减轻群落内的光竞争,进而影响群落内的树种空间分布格局。马尾松和杉木作为早期先锋树种入侵林地后,逐渐改善了立地条件,为其他树种进入群落创造了条件,使得松林能够向松阔混交林方向演替。随后由于马尾松和杉木生物学特性在垂直结构上与其他树种产生了分层现象,加之密度制约和扩散限制等因素[12]共同作用,群落中的常绿阔叶树种逐渐获得更多的环境资源并对针叶树种和落叶阔叶树种的幼苗更新产生负作用,松阔混交林逐渐向常绿阔叶林演替。这种演替机制与XIANG等[9]的研究结果一致,即在不发生干扰的情况下,次生林群落中的不耐荫落叶树种将逐渐被耐荫的常绿阔叶树种所取代。

    通过比较不同森林类型主要树种组成可以发现:3类森林群落的主要树种组成存在差异,落叶阔叶树种枫香和化香仅出现在松林主要树种中,而松阔混交林中已经没有落叶树种,但出现了常绿阔叶树种石栎和檵木。在常绿阔叶林中,主要树种则由木荷及青冈、石栎和苦槠等3种壳斗科Fagaceae树种组成。树种组成的变化是群落演替的结果,森林经营管理可根据此对松林和松阔混交林进行适当抚育,伐除部分针叶树种及清理林内枯立木,改善林分内的光照条件,促进常绿阔叶树种的生长。在常绿阔叶林中,则可通过修枝来改善林内光照条件,也可通过为森林土壤施加养分来改善目标树种的营养状况,通过人为栽种苗木等手段来加快木荷、石栎等目标树种的更新、生长和郁闭,促进森林群落向顶级群落发展并促进生物多样性的恢复。

    本研究通过方差比率法、χ2检验和Spearman秩相关系数检验,对不同类型次生林群落种间的联结性和相关性进行了分析。其中,χ2检验结果是由种对的二元数据转换计算而来,反映的是物种能否共存和共存的概率,不能表达低显著度种对的内在相关性情况和强度。Spearman秩相关系数属定量检验方法,能够在一定程度上检验种对数量关系上的变化,对种对间的相关性及其显著性水平更为敏感。Spearman秩相关系数属定量检验与定性的方差比率法、χ2检验结合使用能够更全面地反映物种的种间关系[36]

    通过测度常绿阔叶林、松阔混交林和松林群落中主要树种的生态位重叠程度、空间分布格局和种间联结分析可以发现:本研究各群落乔木层主要树种在空间分布格局中独立性相对较强,物种间虽存在比较相似的环境资源需求,但种间联结关系比较松散,群落演替尚未进入成熟期。此外也可以看出:树种间的空间分布格局、联结性与种群的生态位重叠之间存在密切关联。一般情况下,群落内优势树种种间正联结性越强,其生态位重叠程度越高,种间负联结性越强,生态位重叠程度越低[37]。样地群落的总体关联性检验结果显示:各群落种间总体关联性呈不显著的正相关。χ2检验发现:多数种对都呈不显著的正联结,这与各群落物种生态位重叠程度的分析结果基本吻合。各群落主要树种间的Spearman秩相关分析结果与种间空间关联性结果也有比较一致的表现,这也说明植物种间关系对植物种群空间分布格局的形成有重要意义。本研究可为进一步揭示物种自身生物特性、环境条件及种间关系等综合作用下的种群空间分布格局形成机制提供依据,但群落中植物种间关系及空间分布格局是处在动态变化过程中的,本研究结果仅反映某一特定时间节点的群落状态,有待长期的群落动态监测研究。

  • 图  1  滨海湿地大气-植被-水体-土壤间的碳循环关键过程

    Figure  1  Key processe of carbon cycle among atmosphere, vegetation, water and soil in coastal wetlands

    表  1  碳循环模型的开发及其在氮输入影响中的应用

    Table  1.   Development and application in wetland of carbon cycle models

    模型名称模型类型模型概述建立年份时间步长适用范围应用案例
    Biome-BGC[85]过程模型(生物地球化学模型)模拟生态系统中植被、凋落物、土壤碳、氮、水的储量和通量,模拟木本植物、C3/C4草本植物的碳、氮、水的循环过程与交互影响19881 d常绿/落叶、针叶/阔叶林、C3/C4草本植物和灌木林,点位、区域和全球尺度增加了地下水、苔藓植被、土壤营养物质分解、土壤水分压力指数等作用机理的描述。应用于加拿大森林湿地、红壤丘陵区湿地、千烟洲人工湿地、中国南海湿地红树林等湿地生态系统净初级生产力(NPP)、生物量和土壤碳积累的模拟研究[86-89]
    CENTURY[90]过程模型(生物地球化学模型)基于土壤的结构功能,模拟碳、氮和磷的生物地球化学循环过程,同时结合气温、降水量等气候驱动因子,模拟生态系统生产力198830 d森林、草原生态系统通过调整厌氧参数,用于泥炭湿地碳动态模拟[91]
    DNDC[92]过程模型(生物地球化学模型)增加了苔藓及草本植物的生长参数,开发了地下水位动态变化、厌氧条件下土壤生物地球化学过程等算法[93]19921 d森林、农田、草地、湿地生态系统,点位和区域尺度最初建立用于描述农业生态系统,现可应用于水稻田、湿地、泥炭地等生态系统的碳氮循环研究[94-97]
    AVIM[98]过程耦合模型(大气-植被耦合模型)陆面物理-植被生理生态的有机耦合,包含植被-土壤-大气间热量和水分的交换以及植物光合-呼吸等CO2的交换,实现了大气和包括根圈在内的植物圈之间的动态相互作用19951 h森林、草地、农田、冰川、湿地、湖泊等生态系统添加土壤碳氮动态模块[99],再与其他模块相结合,已应用于研究湿地覆被类型对模拟结果的影响[100]
    TECO[101]过程模型(生物地球化学模型)具有与目前大多数生物地球化学模型相似的碳池结构和参数。经过改进和完善,可用于模拟陆地生态系统中的碳、氮和水文循环2008冠层光合作用和土壤水分动态子模型:1 h;植物生长和土壤碳转移子模型:1 d陆地生态系统调节植物和生态系统对CO2升高、变暖和降水变化的交互响应的关键过程,已应用于Duke森林应对CO2升高的固碳过程的若干研究中[102-103]以及SPRUCE泥炭地的碳动力和土壤动力学的研究中[104]
    PEATBOG[105]过程模型(生物地球化学模型)强调了土壤固、水、气相与植被之间的物质流动,土壤组分的高空间分辨率,对碳、氮通量的化学计量控制,以及对植被和土壤中碳、氮反应活性的持续概念化20131 d泥炭地碳氮耦合循环的模拟已应用于研究长期施氮对泥炭沼泽碳循环的影响分析,并模拟预测了未来80 a间各碳组分的动态趋势,以确定氮肥的潜在影响和影响模型行为的主要因素[106]
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  • [1] MCLEOD E, CHMURA G L, BOUILLON S, et al. A blueprint for blue carbon: toward an improved understanding of the role of vegetated coastal habitats in sequestering CO2 [J]. Front Ecol Environ, 2011, 9(10): 552 − 560.
    [2] KIRWAN M L, GUNTENSPERGEN G R. Feedbacks between inundation, root production, and shoot growth in a rapidly submerging brackish marsh [J]. J Ecol, 2012, 100(3): 764 − 770.
    [3] KIRWAN M, TEMMERMAN S, SKEEHAN E, et al. Overestimation of marsh vulnerability to sea level rise [J]. Nat Clim Change, 2016, 6(3): 253 − 260.
    [4] KROEGER K D, CROOKS S, MOSEMAN-VALTIERRA S, et al. Restoring tides to reduce methane emissions in impounded wetlands: a new and potent Blue Carbon climate change intervention [J]. Sci Rep, 2017, 7(1): 11914. doi: 10.1038/s41598-017-12138-4.
    [5] GALLOWAY J N, TOWNSEND A R, ERISMAN J W, et al. Transformation of the nitrogen cycle: recent trends, questions, and potential solutions [J]. Science, 2008, 320(5878): 889 − 892.
    [6] CHMURA G L, ANISFELD S C, CAHOON D R, et al. Global carbon sequestration in tidal, saline wetland soils [J]. Global Biogeochem Cycles, 2003, 17(4): 1111. doi: 10.1029/2002gb001917.
    [7] LI Juanyong, HAN Guangxuan, ZHAO Mingliang, et al. Nitrogen input weakens the control of inundation frequency on soil organic carbon loss in a tidal salt marsh [J]. Estuarine Coastal Shelf Sci, 2020, 243: 106878. doi: 10.1016/j.ecss.2020.106878.
    [8] HOBBIE S E, NADELHOFFER K J, HÖGBERG P. A synthesis: the role of nutrients as constraints on carbon balances in boreal and arctic regions [J]. Plant Soil, 2002, 242(1): 163 − 170.
    [9] TAO Baoxian, SONG Changchun, GUO Yuedong. Short-term effects of nitrogen additions and increased temperature on wetland soil respiration, Sanjiang Plain, China [J]. Wetlands, 2013, 33(4): 727 − 736.
    [10] LIU Jun, WU Nana, WANG Hui, et al. Nitrogen addition affects chemical compositions of plant tissues, litter and soil organic matter [J]. Ecology, 2016, 97(7): 1796 − 1806.
    [11] SONG Bing, SUN Jian, ZHOU Qingping, et al. Initial shifts in nitrogen impact on ecosystem carbon fluxes in an alpine meadow: patterns and causes [J]. Biogeosciences, 2017, 14(17): 3947 − 3956.
    [12] WANG Jing, GAO Yingzhi, ZHANG Yunhai, et al. Asymmetry in above- and belowground productivity responses to N addition in a semi-arid temperate steppe [J]. Global Change Biol, 2019, 25(9): 2958 − 2969.
    [13] QU Wendi, HAN Guangxuan, ELLER F, et al. Nitrogen input in different chemical forms and levels stimulates soil organic carbon decomposition in a coastal wetland [J]. Catena, 2020, 194: 104672. doi: 10.1016/j.catena.2020.104672.
    [14] TRUMBORE S. Carbon respired by terrestrial ecosystems-recent progress and challenges [J]. Global Change Biol, 2006, 12(2): 141 − 153.
    [15] LUO Yiqi, KEENAN T F, SMITH M. Predictability of the terrestrial carbon cycle [J]. Global Change Biol, 2015, 21(5): 1737 − 1751.
    [16] 曹磊, 宋金明, 李学刚, 等. 中国滨海盐沼湿地碳收支与碳循环过程研究进展[J]. 生态学报, 2013, 33(17): 5141 − 5152.

    CAO Lei, SONG Jinming, LI Xuegang, et al. Research progresses in carbon budget and carbon cycle of the coastal salt marshes in China [J]. Acta Ecol Sin, 2013, 33(17): 5141 − 5152.
    [17] MITSCH W J, GOSSELINK J G. Wetlands[M]. 4th ed. Hoboken: John Wiley & Sons, Inc., 2007.
    [18] WANG Dongqi, CHEN Zhenlou, XU Shiyuan. Methane emission from Yangtze estuarine wetland, China [J]. J Geophys Res, 2009, 114: G02011. doi: 10.1029/2008JG000857.
    [19] 韩广轩. 潮汐作用和干湿交替对盐沼湿地碳交换的影响机制研究进展[J]. 生态学报, 2017, 37(24): 8170 − 8178.

    HAN Guangxuan. Effect of tidal action and drying-wetting cycles on carbon exchange in a salt marsh: progress and prospects [J]. Acta Ecol Sin, 2017, 37(24): 8170 − 8178.
    [20] 仝川, 鄂焱, 廖稷, 等. 闽江河口潮汐沼泽湿地CO2排放通量特征[J]. 环境科学学报, 2011, 31(12): 2830 − 2840.

    TONG Chuan, E Yan, LIAO Ji, et al. Carbon dioxide emission from tidal marshes in the Min River Estuary [J]. Acta Sci Circumstantiae, 2011, 31(12): 2830 − 2840.
    [21] 王玲玲, 孙志高, 牟晓杰, 等. 黄河口滨岸潮滩湿地CO2、CH4和N2O通量特征初步研究[J]. 草业学报, 2011, 20(3): 51 − 61.

    WANG Lingling, SUN Zhigao, MOU Xiaojie, et al. A preliminary study on carbon dioxide, methane and nitrous oxide fluxes from intertidal flat wetlands of the Yellow River estuary [J]. Acta Pratacult Sin, 2011, 20(3): 51 − 61.
    [22] 贺文君, 韩广轩, 宋维民, 等. 潮汐作用对黄河三角洲盐沼湿地甲烷排放的影响[J]. 生态学报, 2019, 39(17): 6238 − 6246.

    HE Wenjun, HAN Guangxuan, SONG Weimin, et al. Effects of tidal action on methane emissions over a salt marsh in the Yellow River Delta, China [J]. Acta Ecol Sin, 2019, 39(17): 6238 − 6246.
    [23] POFFENBARGER H J, NEEDELMAN B A, MEGONIGAL J P. Salinity influence on methane emissions from tidal marshes [J]. Wetlands, 2011, 31(5): 831 − 842.
    [24] CHOI Y, WANG Yang. Dynamics of carbon sequestration in a coastal wetland using radiocarbon measurements [J]. Global Biogeochem Cycles, 2004, 18: GB4016. doi: 10.1029/2004GB002261.
    [25] KAYRANLI B, SCHOLZ M, MUSTAFA A, et al. Carbon storage and fluxes within freshwater wetlands: a critical review [J]. Wetlands, 2010, 30(1): 111 − 124.
    [26] THORNTON S F, MCMANUS J. Application of organic carbon and nitrogen stable isotope and C/N ratios as source indicators of organic matter provenance in estuarine systems: evidence from the Tay Estuary, Scotland [J]. Estuarine Coastal Shelf Sci, 1994, 38(3): 219 − 233.
    [27] VERNBERG F J. Salt-marsh processes: a review [J]. Environ Toxicol Chem, 1993, 12(12): 2167 − 2195.
    [28] SYED K H, FLANAGAN L B, CARLSON P J, et al. Environmental control of net ecosystem CO2 exchange in a treed, moderately rich fen in northern Alberta [J]. Agric For Meteorol, 2006, 140(1): 97 − 114.
    [29] EXBRAYAT J F, PITMAN A J, ZHANG Q, et al. Examining soil carbon uncertainty in a global model: response of microbial decomposition to temperature, moisture and nutrient limitation [J]. Biogeosciences, 2013, 10(11): 7095 − 7108.
    [30] BRAGAZZA L, BUTTLER A, HABERMACHER J, et al. High nitrogen deposition alters the decomposition of bog plant litter and reduces carbon accumulation [J]. Global Change Biol, 2012, 18(3): 1163 − 1172.
    [31] YUAN Zhiyou, CHEN H Y H. A global analysis of fine root production as affected by soil nitrogen and phosphorus [J]. Proc Biol Sci, 2012, 279(1743): 3796 − 3802.
    [32] YUAN Zhiyou, LI Linghao, HAN Xingguo, et al. Nitrogen response efficiency increased monotonically with decreasing soil resource availability: a case study from a semiarid grassland in northern China [J]. Oecologia, 2006, 148(4): 564 − 572.
    [33] BOBBINK R, HICKS K, GALLOWAY J, et al. Global assessment of nitrogen deposition effects on terrestrial plant diversity: a synthesis [J]. Ecol Appl, 2010, 20(1): 30 − 59.
    [34] KOOTTATEP T, POLPRASERT C. Role of plant uptake on nitrogen removal in constructed wetlands located in the tropics [J]. Water Sci Technol, 1997, 36(12): 1 − 8.
    [35] SUN Yuan, WANG Cuiting, CHEN H Y H, et al. Responses of C∶N stoichiometry in plants, soil, and microorganisms to nitrogen addition [J]. Plant Soil, 2020, 456(1/2): 277 − 287.
    [36] MOE S J, STELZER R S, FORMAN M R, et al. Recent advances in ecological stoichiometry: insights for population and community ecology [J]. Oikos, 2005, 109(1): 29 − 39.
    [37] HOUGHTON R. Terrestrial carbon sinks-uncertain explanations [J]. Biologist, 2002, 49: 155 − 60.
    [38] 刘德燕, 宋长春. 湿地植物小叶章对外源氮输入的响应[J]. 应用生态学报, 2008, 19(12): 2599 − 2604.

    LIU Deyan, SONG Changchun. Responses of marsh wetland plant Calamagrostis angustifolia to exogenous nitrogen input [J]. Chin J Appl Ecol, 2008, 19(12): 2599 − 2604.
    [39] 彭琴, 董云社, 齐玉春. 氮输入对陆地生态系统碳循环关键过程的影响[J]. 地球科学进展, 2008, 23(8): 874 − 883.

    PENG Qin, DONG Yunshe, QI Yuchun. Influence of external nitrogen input on key processes of carbon cycle in terrestrial ecosystem [J]. Adv Earth Sci, 2008, 23(8): 874 − 883.
    [40] NAKAJI T, TAKENAGA S, KUROHA M, et al. Photosynthetic response of Pinus densiflora seedlings to high nitrogen load [J]. Environ Sci, 2002, 9: 269 − 282.
    [41] 张立新, 李生秀. 长期水分胁迫下氮、钾对夏玉米叶片光合特性的影响[J]. 植物营养与肥料学报, 2009, 15(1): 82 − 90.

    ZHANG Lixin, LI Shengxiu. Effects of nitrogen and potassium on photosynthetic characteristics in summer maize leaves under long-term water stress [J]. Plant Nutr Fert Sci, 2009, 15(1): 82 − 90.
    [42] HUANGFU Chaohe, LI Huiyan, CHEN Xinwei, et al. Response of an invasive plant, Flaveria bidentis, to nitrogen addition: a test of form-preference uptake [J]. Biol Invasions, 2016, 18(11): 3365 − 3380.
    [43] LU Xiankai, VITOUSEK P M, MAO Qinggong, et al. Plant acclimation to long-term high nitrogen deposition in an N-rich tropical forest [J]. Proc Natl Acad Sci, 2018, 115(20): 5187 − 5192.
    [44] BREITBURG D, LEVIN L A, OSCHLIES A, et al. Declining oxygen in the global ocean and coastal waters [J]. Science, 2018, 359(6371): eaam7240. doi: 10.1126/science.aam7240.
    [45] ZHANG Yaohong, XU Xianju, LI Yang, et al. Effects of Spartina alterniflora invasion and exogenous nitrogen on soil nitrogen mineralization in the coastal salt marshes [J]. Ecol Eng, 2016, 87: 281 − 287.
    [46] LUO Min, HUANG Jiafang, ZHU Wenfeng, et al. Impacts of increasing salinity and inundation on rates and pathways of organic carbon mineralization in tidal wetlands: a review [J]. Hydrobiologia, 2019, 827(1): 31 − 49.
    [47] MIN K, KANG H, LEE D. Effects of ammonium and nitrate additions on carbon mineralization in wetland soils [J]. Soil Biol Biochem, 2011, 43(12): 2461 − 2469.
    [48] EISENLORD S D, FREEDMAN Z, ZAK D R, et al. Microbial mechanisms mediating increased soil C storage under elevated atmospheric N deposition [J]. Appl Environ Microbiol, 2013, 79(4): 1191 − 1199.
    [49] LINDA T A, FREY S D, STHULTZ C M, et al. Changes in litter quality caused by simulated nitrogen deposition reinforce the N-induced suppression of litter decay [J]. Ecosphere, 2015, 6(10): 205. doi: 10.1890/ES15-00262.1.
    [50] PESCHEL A R, ZAK D R, CLINE L C, et al. Elk, sagebrush, and saprotrophs: indirect top-down control on microbial community composition and function [J]. Ecology, 2015, 96(9): 2383 − 2393.
    [51] KUZYAKOV Y, FRIEDEL J K, STAHR K. Review of mechanisms and quantification of priming effects [J]. Soil Biol Biochem, 2000, 32(11): 1485 − 1498.
    [52] 程淑兰, 方华军, 徐梦, 等. 氮沉降增加情景下植物-土壤-微生物交互对自然生态系统土壤有机碳的调控研究进展[J]. 生态学报, 2018, 38(23): 8285 − 8295.

    CHENG Shulan, FANG Huajun, XU Meng, et al. Regulation of plant-soil-microbe interactions to soil organic carbon in natural ecosystems under elevated nitrogen deposition: a review [J]. Acta Ecol Sin, 2018, 38(23): 8285 − 8295.
    [53] TAO Baoxian, LIU Chenyang, ZHANG Baohua, et al. Effects of inorganic and organic nitrogen additions on CO2 emissions in the coastal wetlands of the Yellow River Delta, China [J]. Atmos Environ, 2018, 185: 159 − 167.
    [54] HASSELQUIST N J, METCALFE D B, HÖGBERG P. Contrasting effects of low and high nitrogen additions on soil CO2 flux components and ectomycorrhizal fungal sporocarp production in a boreal forest [J]. Global Change Biol, 2012, 18(12): 3596 − 3605.
    [55] XU Yehong, FAN Jianling, DING Weixin, et al. Characterization of organic carbon in decomposing litter exposed to nitrogen and sulfur additions: links to microbial community composition and activity [J]. Geoderma, 2017, 286: 116 − 124.
    [56] JIAN Siyang, LI Jianwei, CHEN Ji, et al. Soil extracellular enzyme activities, soil carbon and nitrogen storage under nitrogen fertilization: a meta-analysis [J]. Soil Biol Biochem, 2016, 101: 32 − 43.
    [57] YUAN Xia, QIN Wenkuan, XU Hao, et al. Sensitivity of soil carbon dynamics to nitrogen and phosphorus enrichment in an alpine meadow [J]. Soil Biol Biochem, 2020, 150: 107984. doi: 10.1016/j.soilbio.2020.107984.
    [58] BAUER J E, CAI Weijun, RAYMOND P A, et al. The changing carbon cycle of the coastal ocean [J]. Nature, 2013, 504(7478): 61 − 70.
    [59] BIANCHI T S. The role of terrestrially derived organic carbon in the coastal ocean: a changing paradigm and the priming effect [J]. Proc Natl Acad Sci, 2011, 108(49): 19473. doi: 10.1073/pnas.1017982108.
    [60] MAJIDZADEH H, UZUN H, RUECKER A, et al. Extreme flooding mobilized dissolved organic matter from coastal forested wetlands [J]. Biogeochemistry, 2017, 136(3): 293 − 309.
    [61] HERRMANN M, NAJJAR R G, KEMP W M, et al. Net ecosystem production and organic carbon balance of U. S. East Coast estuaries: a synthesis approach [J]. Global Biogeochem Cycles, 2015, 29(1): 96 − 111.
    [62] NEUBAUER S C, ANDERSON I C. Transport of dissolved inorganic carbon from a tidal freshwater marsh to the York River estuary [J]. Limnol Oceanogr, 2003, 48(1): 299 − 307.
    [63] WANG Z A, KROEGER K D, GANJU N K, et al. Intertidal salt marshes as an important source of inorganic carbon to the coastal ocean [J]. Limnol Oceanogr, 2016, 61(5): 1916 − 1931.
    [64] CZAPLA K M, ANDERSON I C, CURRIN C A. Net ecosystem carbon balance in a north Carolina, USA, salt marsh [J]. J Geophys Res Biogeosci, 2020, 125(10): e2019JG005509. doi: 10.1029/2019JG005509.
    [65] MORRIS J T, SHAFFER G P, NYMAN J A. Brinson review: perspectives on the influence of nutrients on the sustainability of coastal wetlands [J]. Wetlands, 2013, 33(6): 975 − 988.
    [66] DAVIS J, CURRIN C, MORRIS J T. Impacts of fertilization and tidal inundation on elevation change in microtidal, low relief salt marshes [J]. Estuaries Coasts, 2017, 40(6): 1677 − 1687.
    [67] GRAHAM S A, MENDELSSOHN I A. Coastal wetland stability maintained through counterbalancing accretionary responses to chronic nutrient enrichment [J]. Ecology, 2014, 95(12): 3271 − 3283.
    [68] MENÉNDEZ M C, DELGADO A L, BERASATEGUI A A, et al. Seasonal and tidal dynamics of water temperature, salinity, chlorophyll-a, suspended particulate matter, particulate organic matter, and zooplankton abundance in a shallow, mixed estuary (Bahía Blanca, Argentina) [J]. J Coastal Res, 2015, 32(5): 1051 − 1061.
    [69] BLOESCH J. Mechanisms, measurement and importance of sediment resuspension in lakes [J]. Marine Freshwater Res, 1995, 46(1): 295 − 304.
    [70] ZHANG Yafei, LIANG Jie, ZENG Guangming, et al. How climate change and eutrophication interact with microplastic pollution and sediment resuspension in shallow lakes: a review [J]. Sci Total Environ, 2020, 705: 135979. doi: 10.1016/j.scitotenv.2019.135979.
    [71] 李长生. 生物地球化学的概念与方法:DNDC模型的发展[J]. 第四纪研究, 2001, 21(2): 89 − 99.

    LI Changsheng. Biogeochemical concepts and methodologies: development of the DNDC model [J]. Quaternary Sci, 2001, 21(2): 89 − 99.
    [72] XU Wen, LUO X S, PAN Yuepeng, et al. Quantifying atmospheric nitrogen deposition through a nationwide monitoring network across China [J]. Atmos Chem Phys Discuss, 2015, 15: 18365 − 18405.
    [73] 张钊, 辛晓平. 生物地球化学模型DNDC的研究进展与碳动态模拟应用[J]. 草地学报, 2017, 25(3): 445 − 452.

    ZHANG Zhao, XIN Xiaoping. Research progress of biogeochemistry model DNDC in carbon dynamic modeling [J]. Acta Agrestia Sin, 2017, 25(3): 445 − 452.
    [74] CHENG S J, HESS P G, WIEDER W R, et al. Decadal fates and impacts of nitrogen additions on temperate forest carbon storage: a data-model comparison [J]. Biogeosciences, 2019, 16(13): 2771 − 2793.
    [75] WANG Yingping, LAW R M, PAK B. A global model of carbon, nitrogen and phosphorus cycles for the terrestrial biosphere [J]. Biogeosciences, 2010, 7(7): 2261 − 2282.
    [76] ZAEHLE S, FRIEND A D, FRIEDLINGSTEIN P, et al. Carbon and nitrogen cycle dynamics in the O-CN land surface model: 2. Role of the nitrogen cycle in the historical terrestrial carbon balance [J]. Global Biogeochem Cycles, 2010, 24: GB1006. doi: 10.1029/2009GB003522.
    [77] 袁文平, 蔡文文, 刘丹, 等. 陆地生态系统植被生产力遥感模型研究进展[J]. 地球科学进展, 2014, 29(5): 541 − 550.

    YUAN Wenping, CAI Wenwen, LIU Dan, et al. Satellite-based vegetation production models of terrestrial ecosystem: an overview [J]. Adv Earth Sci, 2014, 29(5): 541 − 550.
    [78] MONTEITH J L. Solar radiation and productivity in tropical ecosystems [J]. J Appl Ecol, 1972, 9: 747 − 766.
    [79] POTTER C. The carbon budget of California [J]. Environ Sci Policy, 2010, 13(5): 373 − 383.
    [80] VETTER M, CHURKINA G, JUNG M, et al. Analyzing the causes and spatial pattern of the European 2003 carbon flux anomaly in Europe using seven models [J]. Biogeosci Discuss, 2008, 4: 1201 − 1240.
    [81] BALDOCCHI D. Measuring fluxes of trace gases and energy between ecosystems and the atmosphere-the state and future of the eddy covariance method [J]. Global Change Biol, 2014, 20(12): 3600 − 3609.
    [82] WANG Xiaoguo, ZHU Bo, LI Changsheng, et al. Dissecting soil CO2 fluxes from a subtropical forest in China by integrating field measurements with a modeling approach [J]. Geoderma, 2011, 161(1/2): 88 − 94.
    [83] BOHN T J, PODEST E, SCHROEDER R, et al. Modeling the large-scale effects of surface moisture heterogeneity on wetland carbon fluxes in the West Siberian Lowland [J]. Biogeosciences, 2013, 10(10): 6559 − 6576.
    [84] FRIEDLINGSTEIN P, ANDREW R M, ROGELJ J, et al. Persistent growth of CO2 emissions and implications for reaching climate targets [J]. Nat Geosci, 2014, 7(10): 709 − 715.
    [85] RUNNING S W, COUGHLAN J C. A general model of forest ecosystem processes for regional applications Ⅰ. hydrologic balance, canopy gas exchange and primary production processes [J]. Ecol Modelling, 1988, 42(2): 125 − 154.
    [86] BOND-LAMBERTY B, GOWER S T, AHL D E. Improved simulation of poorly drained forests using Biome-BGC [J]. Tree Physiol, 2007, 27(5): 703 − 715.
    [87] 曾慧卿, 刘琪璟, 冯宗炜, 等. 基于BIOME-BGC模型的红壤丘陵区湿地松(Pinus elliottii)人工林GPP和NPP[J]. 生态学报, 2008, 28(11): 5314 − 5321.

    ZENG Huiqing, LIU Qijing, FENG Zongwei, et al. GPP and NPP study of Pinus elliottii forest in red soil hilly region based on BIOME-BGC model [J]. Acta Ecol Sin, 2008, 28(11): 5314 − 5321.
    [88] 马泽清, 刘琪璟, 王辉民, 等. 中亚热带人工湿地松林(Pinus elliottii)生产力观测与模拟[J]. 中国科学: 地球科学, 2008, 38(8): 1005 − 1015.

    MA Zeqing, LIU Qijing, WANG Huimin, et al. Productivity observation and simulation of pine forest (Pinus elliottii) in subtropical constructed wetland [J]. Sci Sin Terrae, 2008, 38(8): 1005 − 1015.
    [89] LUO Zhongkui, SUN Osbert Jianxin, WANG Enli, et al. Modeling productivity in mangrove forests as impacted by effective soil water availability and its sensitivity to climate change using Biome-BGC [J]. Ecosystems, 2010, 13(7): 949 − 965.
    [90] PARTON W J, STEWART J W B, COLE C V. Dynamics of C, N, P and S in grassland soils: a model [J]. Biogeochemistry, 1988, 5(1): 109 − 131.
    [91] CHIMNER R A, COOPER D J, PARTON W J. Modeling carbon accumulation in Rocky Mountain fens [J]. Wetlands, 2002, 22(1): 100 − 110.
    [92] LI Changsheng, FROLKING S, FROLKING T A. A model of nitrous oxide evolution from soil driven by rainfall events: 1. model structure and sensitivity [J]. J Geophys Res Atmos, 1992, 97(D9): 9759 − 9776.
    [93] ZHANG Yu, LI Changsheng, TRETTIN C C, et al. An integrated model of soil, hydrology, and vegetation for carbon dynamics in wetland ecosystems [J]. Global Biogeochem Cycles, 2002, 16(4): 1061. doi: 10.1029/2001GB001838.
    [94] 田展, 牛逸龙, 孙来祥, 等. 基于DNDC模型模拟气候变化影响下的中国水稻田温室气体排放[J]. 应用生态学报, 2015, 26(3): 793 − 799.

    TIAN Zhan. NIU Yilong, SUN Laixiang, et al. China’s rice field greenhouse gas emission under climate change based on DNDC model simulation [J]. Chin J Appl Ecol, 2015, 26(3): 793 − 799.
    [95] GENG Xuemeng, YANG Meng, GRACE J, et al. Simulating methane emissions from the littoral zone of a reservoir by wetland DNDC Model [J]. J Resour Ecol, 2016, 7(4): 281 − 290.
    [96] CUI Jianbo, LI Changsheng, TRETTIN C. Analyzing the ecosystem carbon and hydrologic characteristics of forested wetland using a biogeochemical process model [J]. Global Change Biol, 2005, 11(2): 278 − 289.
    [97] DENG Jia, LI Changsheng, FROLKING S. Modeling impacts of changes in temperature and water table on C gas fluxes in an Alaskan peatland [J]. J Geophys Res Biogeosci, 2015, 120(7): 1279 − 1295.
    [98] JI Jinjun. A climate-vegetation interaction model: simulating physical and biological processes at the surface [J]. J Biogeogr, 1995, 22(2/3): 445 − 451.
    [99] JI Jinjun, HUANG Mei, LI Kerang. Prediction of carbon exchanges between China terrestrial ecosystem and atmosphere in 21st century [J]. Sci China Ser D Earth Sci, 2008, 51(6): 885 − 898.
    [100] 史学丽, 张芳, 周文艳, 等. CG-LTDR地表覆盖数据对BCC-AVIM1.0陆面温度模拟的影响研究[J]. 地球信息科学学报, 2015, 17(11): 1294 − 1303.

    SHI Xueli, ZHANG Fang, ZHOU Wenyan, et al. Impacts of CG-LTDR land cover dataset updates on the ground temperature simulation with BCCAVIM 1.0 [J]. J Geo-Inf Sci, 2015, 17(11): 1294 − 1303.
    [101] WENG Ensheng, LUO Yiqi. Soil hydrological properties regulate grassland ecosystem responses to multifactor global change: a modeling analysis [J]. J Geophys Res Biogeosci, 2008, 113: G03003. doi: 10.1029/2007JG000539.
    [102] LUO Yiqi, WHITE L W, CANADELL J G, et al. Sustainability of terrestrial carbon sequestration: a case study in Duke Forest with inversion approach [J]. Global Biogeochem Cycles, 2003, 17(1): 1021. doi: 10.1029/2002GB001923.
    [103] WHITE L W, LUO Yiqi. Modeling and inversion of net ecological exchange data using an Ito stochastic differential equation approach [J]. Appl Math Comput, 2008, 196(2): 686 − 704.
    [104] HUANG Yuanyuan, JIANG Jiang, MA Shuang, et al. Soil thermal dynamics, snow cover, and frozen depth under five temperature treatments in an ombrotrophic bog: constrained forecast with data assimilation [J]. J Geophys Res Biogeosci, 2017, 122(8): 2046 − 2063.
    [105] WU Y, BLODAU C. PEATBOG: a biogeochemical model for analyzing coupled carbon and nitrogen dynamics in northern peatlands [J]. Geosci Model Dev, 2013, 6(4): 1173 − 1207.
    [106] WU Y, BLODAU C, MOORE T R, et al. Effects of experimental nitrogen deposition on peatland carbon pools and fluxes: a modelling analysis [J]. Biogeosciences, 2015, 12(1): 79 − 101.
    [107] HAN Guangxuan, CHU Xiaojing, XING Qinghui, et al. Effects of episodic flooding on the net ecosystem CO2 exchange of a supratidal wetland in the Yellow River Delta [J]. J Geophys Res Biogeosci, 2015, 120(8): 1506 − 1520.
    [108] KANG Xiaoming, LI Yong, WANG Jinzhi, et al. Precipitation and temperature regulate the carbon allocation process in alpine wetlands: quantitative simulation [J]. J Soils Sediments, 2020, 20(9): 3300 − 3315.
    [109] CHENG S J, HESS P G, WIEDER W R, et al. Decadal impacts of nitrogen additions on temperate forest carbon sinks: a data-model comparison [J]. Biogeosci Discuss, 2018, doi: 10.5194/bg-2018-505.
    [110] JANSSENS I A, DIELEMAN W, LUYSSAERT S, et al. Reduction of forest soil respiration in response to nitrogen deposition [J]. Nat Geosci, 2010, 3(5): 315 − 322.
    [111] FREY S D, OLLINGER S, NADELHOFFER K, et al. Chronic nitrogen additions suppress decomposition and sequester soil carbon in temperate forests [J]. Biogeochemistry, 2014, 121(2): 305 − 316.
    [112] SULMAN B N, BRZOSTEK E R, MEDICI C, et al. Feedbacks between plant N demand and rhizosphere priming depend on type of mycorrhizal association [J]. Ecol Lett, 2017, 20(8): 1043 − 1053.
    [113] WIEDER W R, BONAN G B, ALLISON S D. Global soil carbon projections are improved by modelling microbial processes [J]. Nat Clim Change, 2013, 3(10): 909 − 912.
    [114] ZHU Qing, RILEY W J, TANG Jinyun. A new theory of plant-microbe nutrient competition resolves inconsistencies between observations and model predictions [J]. Ecol Appl, 2017, 27(3): 875 − 886.
    [115] BINGHAM A H, COTRUFO M F. Organic nitrogen storage in mineral soil: implications for policy and management [J]. Sci Total Environ, 2016, 551/552: 116 − 126.
    [116] KEENAN T F, BAKER I, BARR A, et al. Terrestrial biosphere model performance for inter-annual variability of land-atmosphere CO2 exchange [J]. Global Change Biol, 2012, 18(6): 1971 − 1987.
    [117] de KAUWE M G, MEDLYN B E, ZAEHLE S, et al. Forest water use and water use efficiency at elevated CO2: a model-data intercomparison at two contrasting temperate forest FACE sites [J]. Global Change Biol, 2013, 19(6): 1759 − 1779.
    [118] LUO Yiqi, RANDERSON J T, ABRAMOWITZ G, et al. A framework for benchmarking land models [J]. Biogeosciences, 2012, 9(10): 3857 − 3874.
    [119] RANDERSON J T, HOFFMAN F M, THORNTON P E, et al. Systematic assessment of terrestrial biogeochemistry in coupled climate-carbon models [J]. Global Change Biol, 2009, 15(10): 2462 − 2484.
    [120] SMITH M J, PURVES D W, VANDERWEL M C, et al. The climate dependence of the terrestrial carbon cycle, including parameter and structural uncertainties [J]. Biogeosciences, 2013, 10(1): 583 − 606.
    [121] HARARUK O, XIA Jianyang, LUO Yiqi. Evaluation and improvement of a global land model against soil carbon data using a Bayesian Markov chain Monte Carlo method [J]. J Geophys Res Biogeosci, 2014, 119(3): 403 − 417.
    [122] WARD N D, MEGONIGAL J P, BOND-LAMBERTY B, et al. Representing the function and sensitivity of coastal interfaces in Earth system models [J]. Nat Commun, 2020, 11(1): 2458. doi: 10.1038/s41467-020-16236-2.
    [123] PRENTICE I C, LIANG X, MEDLYN B E, et al. Reliable, robust and realistic: the three R’s of next-generation land-surface modelling [J]. Atmos Chem Phys, 2015, 15(10): 5987 − 6005.
    [124] SULMAN B N, MOORE J A M, ABRAMOFF R, et al. Multiple models and experiments underscore large uncertainty in soil carbon dynamics [J]. Biogeochemistry, 2018, 141(2): 109 − 123.
    [125] TANG Guoping, ZHENG Jianqiu, XU Xiaofeng, et al. Biogeochemical modeling of CO2 and CH4 production in anoxic arctic soil microcosms [J]. Biogeosciences, 2016, 13(17): 5021 − 5041.
    [126] ADAM L J, MOZDZER T J, SHEPARD K A, et al. Tidal marsh plant responses to elevated CO2, nitrogen fertilization, and sea level rise [J]. Global Change Biol, 2013, 19(5): 1495 − 1503.
  • [1] 潘丽霞, 姜振辉, 张雯怡, 周家树, 刘娟, 蔡延江, 李永夫.  秸秆及其生物质炭输入对毛竹林土壤氨氧化微生物与氮循环相关酶活性的影响 . 浙江农林大学学报, 2024, 41(1): 1-11. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.20230388
    [2] 汪辉, 刘媛, 时艳, 丁治凡, 蒋洪超.  基于 PLUS 模型的溱湖国家湿地公园情景模拟与预测 . 浙江农林大学学报, 2023, 40(6): 1311-1321. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.20230163
    [3] 朱颖, 顾春望, 李欣, 周婷婷, 冯育青.  基于DPSIRM模型的苏州吴江区湿地生态安全评价 . 浙江农林大学学报, 2022, 39(5): 1114-1123. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.20210758
    [4] 屈田华, 李永夫, 张少博, 郦琳琳, 李永春, 刘娟.  生物质炭输入影响土壤氮素转化与氧化亚氮排放的研究进展 . 浙江农林大学学报, 2021, 38(5): 926-936. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.20200549
    [5] 蔡银美, 张成富, 赵庆霞, 李昕颖, 何腾兵.  模拟根系分泌物输入对森林土壤氮转化的影响研究综述 . 浙江农林大学学报, 2021, 38(5): 916-925. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.20210293
    [6] 金文豪, 邵帅, 陈俊辉, 秦华.  不同类型菌根对土壤碳循环的影响差异研究进展 . 浙江农林大学学报, 2021, 38(5): 953-962. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.20210531
    [7] 龚元, 纪小芳, 花雨婷, 张银龙, 李楠.  基于涡动相关技术的森林生态系统二氧化碳通量研究进展 . 浙江农林大学学报, 2020, 37(3): 593-604. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.20190412
    [8] 何冬梅, 江浩, 祝亚云, 鲁小珍, 王磊.  江苏滨海湿地不同演替阶段土壤微生物生物量碳质量分数特征及其影响因素 . 浙江农林大学学报, 2020, 37(4): 623-630. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.20190565
    [9] 张震, 刘伸伸, 胡宏祥, 何金铃, 马友华, 王一帆, 代宇雨, 徐微.  3种湿地植物对农田沟渠水体氮、磷的消减作用 . 浙江农林大学学报, 2019, 36(1): 88-95. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.2019.01.012
    [10] 李楠, 李龙伟, 张银龙, 陆灯盛, 吴明.  杭州湾滨海湿地生态系统服务价值变化 . 浙江农林大学学报, 2019, 36(1): 118-129. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.2019.01.015
    [11] 朱荣玮, 葛之葳, 阮宏华, 徐瑾, 彭思利.  外源氮输入下土壤有机碳与土壤微生物生物量碳分形特征 . 浙江农林大学学报, 2019, 36(4): 656-663. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.2019.04.004
    [12] 穆亚南, 丁丽霞, 李楠, 陆琳莹, 吴明.  基于面向对象和随机森林模型的杭州湾滨海湿地植被信息提取 . 浙江农林大学学报, 2018, 35(6): 1088-1097. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.2018.06.012
    [13] 张永永, 刘丽娟, 赵盼盼.  新型水体指数的构建及在滨海湿地水域提取中的有效性验证 . 浙江农林大学学报, 2018, 35(4): 735-742. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.2018.04.019
    [14] 高常军, 魏龙, 贾朋, 田惠玲, 李树光.  基于去重复性分析的广东省滨海湿地生态系统服务价值估算 . 浙江农林大学学报, 2017, 34(1): 152-160. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.2017.01.021
    [15] 郭亮, 郑若兰, 吴才华, 胡广, 胡绍庆.  台州湾滨海湿地植物区系 . 浙江农林大学学报, 2016, 33(5): 762-767. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.2016.05.006
    [16] 汪荣.  福建滨海水鸟栖息地主成分分析与评价 . 浙江农林大学学报, 2011, 28(3): 472-478. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.2011.03.020
    [17] 窦荣鹏, 江洪, 余树全, 马元丹, 宋新章, 郭培培, 张小川.  4种亚热带树木凋落叶的分解研究 . 浙江农林大学学报, 2010, 27(2): 163-169. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.2010.02.001
    [18] 张慧玲, 宋新章, 哀建国, 江洪, 余树全.  增强紫外线-B辐射对凋落物分解的影响研究综述 . 浙江农林大学学报, 2010, 27(1): 134-142. doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.2010.01.022
    [19] 周国模, 刘恩斌, 佘光辉.  森林土壤碳库研究方法进展 . 浙江农林大学学报, 2006, 23(2): 207-216.
    [20] 鲁小珍, 叶镜中, 孙多.  带输入项的线性自回归模型在树木物候预测中的应用 . 浙江农林大学学报, 1998, 15(2): 201-206.
  • 期刊类型引用(4)

    1. 张泽宇,朱明喜,陈昊泽,刘明源,张紫微,郑威. 龙眼DlFNS蛋白的生物信息学分析. 分子植物育种. 2024(01): 61-67 . 百度学术
    2. 杨欣蓉,于旭东,吴繁花,蔡泽坪,罗佳佳,曹佩娜. 菠萝蜜BRI1家族成员生物信息学的预测与对比. 分子植物育种. 2021(01): 100-110 . 百度学术
    3. 宋丽娟,陈冬丽,李留振. 探究几种核桃花芽分化规律及分化时间. 天津农林科技. 2019(02): 37-38 . 百度学术
    4. 张云婷,江雷雨,叶云天,冯琛,孙勃,王小蓉,汤浩茹. 草莓FaCOP1的克隆及其表达特异性分析. 园艺学报. 2017(03): 547-556 . 百度学术

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出版历程
  • 收稿日期:  2021-01-18
  • 修回日期:  2021-05-28
  • 网络出版日期:  2021-10-12
  • 刊出日期:  2021-10-20

氮输入影响滨海湿地碳循环过程的模拟研究:进展与展望

doi: 10.11833/j.issn.2095-0756.20210118
    基金项目:  国家自然科学基金资助项目(42071126);美丽中国项目(XDA23050202);中国科学院国际科学合作计划项目(121311KYSB20190029)
    作者简介:

    陈雅文(ORCID: 0000-0003-2071-9760),从事滨海湿地碳交换关键过程研究。E-mail: ywchen@yic.ac.cn

    通信作者: 韩广轩(ORCID: 0000-0003-2651-8599),研究员,博士,博士生导师,从事滨海湿地生态学、碳循环与碳收支、滨海湿地生态系统演变与生态修复等研究。E-mail: gxhan@yic.ac.cn
  • 中图分类号: S153

摘要: 滨海湿地碳循环是控制全球碳储量的关键过程之一,受近岸水体富营养化引起的氮输入影响显著。然而氮输入影响滨海湿地碳循环的过程复杂,利用碳循环模型是研究这些过程的有效手段,在全球气候变化下,评估滨海湿地碳储蓄功能具有重要意义。本研究介绍了滨海湿地碳组分在大气-植被-水体-土壤不同界面间的迁移和转化,总结了氮输入影响碳循环各阶段的规律,发现碳储蓄和碳通量对氮输入的响应受多个因素的共同作用。在此基础上,阐述了目前发展比较成熟且同时具有碳、氮、水相关模块的碳循环主流模型,以及模型为适应湿地而做出的改进及其在湿地的应用情况,为利用模型模拟氮输入影响滨海湿地生态系统碳循环的相关过程提供参考。探讨了将模型应用于湿地,应注意潮汐过程对氮输入影响等相关发展方向,同时就如何减少模型模拟的不准确性等问题展开讨论,对未来的研究方向提出展望。图1表1参126

English Abstract

詹小豪, 王旭航, 叶诺楠, 等. 浙江建德典型天然次生林群落主要乔木树种空间分布格局及种间关系[J]. 浙江农林大学学报, 2021, 38(4): 659-670. DOI: 10.11833/j.issn.2095-0756.20200586
引用本文: 陈雅文, 韩广轩, 蔡延江. 氮输入影响滨海湿地碳循环过程的模拟研究:进展与展望[J]. 浙江农林大学学报, 2021, 38(5): 883-895. DOI: 10.11833/j.issn.2095-0756.20210118
ZHAN Xiaohao, WANG Xuhang, YE Nuonan, et al. Spatial distribution patterns and interspecific relationship of dominant tree species in the tree layer of typical natural secondary forest communities in Jiande, Zhejiang Province[J]. Journal of Zhejiang A&F University, 2021, 38(4): 659-670. DOI: 10.11833/j.issn.2095-0756.20200586
Citation: CHEN Yawen, HAN Guangxuan, CAI Yanjiang. Simulation research on the effects of nitrogen input on carbon cycle process in a coastal wetland: review and prospects[J]. Journal of Zhejiang A&F University, 2021, 38(5): 883-895. DOI: 10.11833/j.issn.2095-0756.20210118
  • 滨海湿地是土壤碳(C)的大型储存库,能够以高于陆地森林生态系统10~100倍的速率持续固定大气二氧化碳(CO2)[1]。尽管全球滨海湿地仅占地球海洋表面的2%,但碳储量却相当可观。据估计,全球滨海湿地每年碳储量约116 Tg,占海洋储碳总量的50%以上[2],这些碳储量和碳通量统称为滨海湿地“蓝碳”。滨海湿地的碳汇速率主要取决于其垂直沉积物的代谢速率和土壤碳汇密度[3],在海平面上升的影响下,这些蓝碳生态系统的土壤不会达到碳饱和[1],是显著区别于内陆生态系统的重要特征。只要土壤的增加量继续与海平面上升保持同步,沉积物的吸收速率就可以保持在一定水平,因此滨海湿地碳汇的寿命相比内陆碳汇的潜力更大,长时期内减缓气候变化能力也更强。目前,滨海湿地作为温室气体排放抵消工程的目标,受到了广泛的关注。然而,定量评估预测全球变化影响滨海湿地生态系统碳汇功能的研究较少,还需进一步分析滨海湿地对全球气候变化与人类干扰的响应机制,为滨海湿地的保护、管理及利用提供参考方向,以达到增加未来碳储存的目的[1, 4]。近代以来,人类活动向生态系统输入了大量的活性氮[5],大气氮富集量已超过工业革命前的2倍[6]。过剩的含氮化合物经由淋洗、径流以及挥发等途径进入江河湖海和大气中,使沿海近岸水体富营养化[7]。在潮汐作用下,富氮水体经由海水入侵进入滨海湿地,对滨海湿地生态系统的碳循环过程产生重要影响[8-10]。已有多项研究证实:氮输入对陆地碳循环过程的影响结果并不一致,由生态系统类型、覆被种类和其他多种环境因素共同决定[11-13]。如何在不同的环境背景下,评估和预测生态系统碳循环过程对氮输入的响应,目前未有定论。基于滨海湿地碳汇功能的重大生态价值,本研究系统阐述了氮输入对滨海湿地生态系统碳循环过程的影响,总结了几种常见的碳循环模型在湿地生态系统应用中的主要研究进展。一方面梳理过去相关研究,提高对氮输入下滨海湿地碳动态变化及碳循环模型领域发展态势的认识;另一方面总结碳循环模型在滨海湿地的应用和不足,为模型改进提供参考方向,有利于更精确地预测滨海湿地碳汇功能的未来发展。

    • 陆地碳循环是由观察者定义的边界开放系统,该边界与外部环境的碳交换主要通过光合作用进行,为碳的主要输入过程,并具有多种输出通量,如自养和异养呼吸以及溶解的有机形式[14-15],由此可见,碳循环过程往往伴随碳形态的转变。滨海湿地主要由植被和土壤2个碳库组成,对2个碳库及其影响因素的认识是湿地碳循环研究的关键部分[16]。此外,水体中也存在部分碳化合物,碳元素在滨海湿地生态系统中主要存在5种形式,包括:植物生物量固定碳、颗粒有机碳(POC)、可溶性有机碳(DOC)、微生物量固定碳及气态终产物如甲烷(CH4)和CO2[17]。它们之间通过各种途径相互转化,又因为条件的差异而使得转化速率不同,从而形成不同存在形式的积累或消耗,决定了滨海湿地生态系统碳源或碳汇的最终结果。

      陆地植物中固定的碳通常被称为“绿碳”,滨海湿地、海藻床等生态系统中固存的碳则被称为“蓝碳”[1]。滨海湿地碳循环的基本模式与其他陆地生态系统存在一定的相似性。湿地植被通过光合作用吸收大气中的CO2,并合成为有机物,完成湿地的碳汇过程。此时碳被固定在植被中,使滨海湿地成为抑制大气温室效应的有效碳汇。当植物死亡,固定的碳在微生物作用下形成腐殖质,分解产生CO2、CH4等气体释放到大气中,此时湿地又转化为碳源[18]。这2个部分是滨海湿地在垂直方向上进行碳交换的主要过程[19],结果主要取决于土壤中的碳,在一定时间内输入输出量以及储存的时间,其核心是土壤中有机碳的动态转化和平衡过程[20-21]

      滨海湿地作为连接陆地与海洋的纽带,与其他湿地类型最大的差异和最显著的特征是存在规律性的潮汐作用,这使得滨海湿地能够随着潮汐过程进行周期性的淹没和暴露,同时伴随盐分表聚与淋洗的干湿交替过程[19],是控制CO2产生、扩散和排放的重要因素[22-23]。除此以外,陆地与海洋的碳库能够通过潮汐在滨海湿地中进行横向交换,例如DOC、可溶性无机碳(DIC)、POC等,因此滨海湿地的碳循环过程相较于普通的湿地生态系统更为复杂。综上,滨海湿地碳循环过程可分为内循环和外循环2个部分(图1),其中外部循环主要由生物地球化学作用及潮汐作用的机械搬运主导,包括有机碳和无机碳的输入输出过程;内部循环则主要由矿化作用主导[6, 24],包括有机碳与无机碳之间的形态转化[25]

      图  1  滨海湿地大气-植被-水体-土壤间的碳循环关键过程

      Figure 1.  Key processe of carbon cycle among atmosphere, vegetation, water and soil in coastal wetlands

      由于上述过程受到多种因素的共同作用,滨海湿地碳库的动态评估存在着不确定性,使湿地既可以表现为碳源也能够充当碳汇,碳源/碳汇的研究方向可总结为主要与湿地年龄、人类活动和气候等条件有关[25]。目前,大部分研究仅集中于短期较小区域尺度内的特征描述[26-27],不一定适用于长期大范围的尺度变化。此外,全球变化对湿地的影响,一方面表现为气候变暖加速土壤腐殖质分解造成的碳释放,使湿地由大气碳汇变为碳源的正反馈循环[28];另一方面还包括氮沉降及近岸水体富营养化等条件的改变,使滨海湿地从增加陆地碳汇的氮限制生态系统[29],可能向增强大气碳汇的负反馈循环方向转变。如何对滨海湿地碳循环过程中碳源、碳汇进行长期预测,以及准确评估计算全球变化条件下湿地碳储存及碳通量的变化,已成为如今亟待解决的问题。

    • 氮输入通过影响植被-土壤产生和消耗CO2的过程来改变其排放通量,所得结果或促进、或抑制或不显著[12, 30]。研究发现:在较大浓度范围内,氮输入均会促进植物生长[31],提高地上净初级生产力,显著增加植物组织的碳氮含量,从而增加凋落物的产量,并有助于土壤有机质(SOM)的积累。但同时氮添加会增强环境过滤作用,降低植物的氮素利用效率[32],减少微生物量碳和植物组织、土壤和微生物量的碳氮比,甚至威胁陆地植物的群落多样性[33]。在氮限制的滨海湿地生态系统中,湿地植物对氮输入的响应与其所积累的氮比例有关,然而该比例同时具有确定性和随机性过程[34],因此得到的结果并不唯一。此外,这些反应还取决于氮的输入速率,以及不同氮化合物在生态系统中的持续时间[35]

      在植物生理方面,氮输入会改变植物的物候规律,叶片化学计量中的碳氮比是控制该因素的主要表现形式,可以为评估地上和地下系统如何响应全球变化提供有用的策略[36]。植物叶片氮含量与植物的光合作用紧密相关,氮输入会增加叶片氮含量[37],使与其相关的叶绿体和光合二氧化碳固定酶大量合成,同时加快光反应和暗反应速率,最终使植物提前进入成熟期和衰老期[38]。氮输入还会提高植物组织中的氮浓度,使植物呼吸作用显著增强[39],但对植物净光合速率与植物光合速率的影响基本一致,随植被类型的变化可能得出不同的结果[40-41]。不同的氮供应形态和浓度也会对植物光合能力产生不同的影响,如添加铵态氮比硝态氮能够更多地刺激植物光合作用[42]。然而植物自身存在适应环境的机制,可以通过增加蒸腾作用来维持营养平衡,从而适应长期的氮沉降[43]。因此,在探究氮输入对碳循环影响机制的过程中,还应考虑植物、微生物等对维持环境稳态的适应性所表现的体征。

    • 输入生态系统的活性氮是影响滨海湿地土壤有机碳(SOC)损失的关键因素[44-45]。受氮输入水平、氮形态、初始土壤性质和其他环境参数差异的影响,氮输入可能导致SOC损失前后不一致[46-47]。氮输入对土壤有机质的影响分为直接和间接2个作用,土壤微生物在其中充当重要的媒介。直接作用表现在改变土壤氮素的可利用性,引起土壤微生物群落的变化,最终影响有机质的产量[48]。间接作用则是先提高植被的生产力,使得凋落物性质发生变化[49],基质的可利用性发生改变[50],最终通过影响土壤微生物间接影响有机质的累积。根据养分挖掘理论与化学计量学理论,氮有效性对SOC存在“激发效应”(priming effect)[51],即增加凋落物的输入会促进土壤有机质的分解,当养分氮处于低有效性时,由养分挖掘理论主导,此时微生物生物量处于k生存策略的正激发,生物能量来源于SOM的分解;当养分氮处于高有效性时,由化学计量学理论主导,微生物生物量处于r生存策略的正激发,主要利用新添加的底物进行生长繁殖[52]

      滨海湿地属于氮限制的生态系统,多项研究证明:氮输入会加速滨海湿地SOC分解并刺激CO2排放[9, 53],然而该结果受到多个因素的共同作用,例如生态系统类型、覆被种类、水位高度、温度等。低氮输入水平会刺激SOC分解,该促进作用可能与土壤养分、植被、土壤碳储量和土壤环境的氮相关变化有关[13]。而在高氮输入水平下,SOC分解则会受到抑制[54-55],使土壤碳的有效性降低[56]。长期和短期的氮输入研究结果也存在差异,两者均会促进土壤养分的整体增加,从而潜在地加速SOM分解。但与短期相比,长期氮输入的生态系统中,总SOC或矿物有机碳(MAOC)的含量可能不会发生变化,而是改变SOC的化学成分,如减少烃基氧等不稳定官能团的百分比,这可能是由于不稳定有机质的分解以及根沉积物输入增强引起的[57]

    • 滨海生态系统内部和系统间的碳循环是全球碳循环和碳收支的主要组成部分[58]。据统计,每年有超过19 Pg的悬浮物在滨海系统间进行交换,其中包括0.3 Pg DOC和0.2 Pg POC[59]。大多数陆源性POC随地表径流散布到海洋中,而存在于近地表土壤水及地下水中的可溶性有机质(DOM),则通过海洋与陆地间的水文连通进行交换,这种交换也称为滨海湿地的碳横向输出。滨海湿地在碳的横向输出过程中起关键作用,在强降雨和冲刷作用下,滨海湿地流失DOM的量达到森林地下有机碳年产量的1/3[60],并为河口提供约35%的总有机碳(TOC)[61]。横向的碳通量是湿地净生态系统碳平衡收支(NECB)中的重要术语[62-63],也是NECB中属于湿地碳损失过程中具有较高重要性和不确定性的组成部分。碳横向输出包括地下水流通和潮汐交换2种途径,虽然地下水DIC浓度高于潮汐水体,但潮汐水体交换速率大于地下水排水速率,使得潮汐作用下碳输出速率大于地下水碳输出速率。最终地下水横向DIC和DOC通量均比潮汐横向通量低1个数量级,因此对整体横向碳输出而言,潮汐的输出占主导地位[64]

      当湿地被潮汐淹没时,呼吸作用产生的大部分CO2以DIC的形式溶解,与总初级生产力(GPP)产生或从植物生物量中浸出的DOC同时进行横向输出。当含氮化合物增加了地上生物量(AGB),并且潮汐水中含有丰富的沉积物时,氮输入会增加该地区外源碳的积累[65]和海拔高度[66]。在氮输入的内陆湿地中,由于垂直排放而损失的碳和横向碳通量能够由外来碳沉积物的增加所抵消[67],因此氮输入对系统内部NECB的影响很小。但是,在滨海湿地的边缘,由于垂直排放和横向输出,碳输入量不足以抵消碳的损失,氮输入将大幅增加滨海系统边缘碳的净损失。因此,如果仅在湿地内部进行相同的研究,就将大大低估氮输入对湿地碳积累的负面影响。氮输入通过增加代谢率来增加横向DIC和DOC的出口,这表明增加对滨海湿地生态系统的氮输入将增加碳向相邻水域的横向输出。同时,在水生环境中除了水平运输外,表层沉积物的垂直再悬浮现象也普遍存在[68]。当电流和波浪引起的底部切应力超过底部沉积物的侵蚀阈值时,就会发生沉积物的潜在迁移[69]。在重悬过程中,重悬的物质包括有机碳及其通过细菌和原生动物产生的降解产物,可能加重水体富营养化[70]

    • 陆地生态系统模型的建立主要基于量(abundance)、群(coupling)、流(flow)、场(field)的概念,分别表示数量、有机整体、交换流动及各种作用力[71]。在模型中,陆地碳循环通常被概念化为一组库或池,如叶、木、根和土壤,通过生态过程以不同的形式如气态、溶解态、固态进行碳的储存和交换[72]。早期的碳循环模型通常以不连续的时间段(如天或年)对系统状态进行更新,并且仅更新单独某一池的碳库,而其他模型则基于具有可变时间间隔的一般或偏微分方程组来实现更新规律。生物地球化学模型对物质循环和元素运动轨迹的追踪表现出较高的吻合度和实用性,真正实现了对整个生态系统过程的模拟。为了实现对生态系统的所有过程参量更全面的模拟,生物地球化学模型一般以小时、日或月为步长,对SOC、植物生物量、土壤含水量、CO2浓度等状态变量进行积分,得到长时间尺度的模拟结果。同时该模型还可结合大面积高频采样数据,实现对生态系统空间上的多指标模拟,从而增大模拟的尺度范围,通过积分最终得到区域尺度上的生态系统状态的估计[73]

      为了准确捕获氮对地球系统模型中陆地碳汇的影响,需要评估模型对氮限制和生态系统氮输入的响应。一方面可以通过评估固定量的氮输入对植物-土壤碳库中碳储量变化的影响,另一方面也可追踪氮输入生态系统后,通过氮损失途径减少的氮量及轨迹[74]。目前,氮循环已被整合到多个全球陆地模型中,各模型按照不同的方式表示碳氮耦合过程[75-76]。例如,当土壤中氮的有效性无法满足植物生长所需氮含量时,这些模型均可模拟氮限制下植物的生长过程,但植物生长对氮需求的表现会有所不同[75-76]。同时,按照模型的建立方法和建立过程,碳循环模型可分为经验、参数和过程模型3个大类。经验模型是严格由数据确定,基于经验推导出的统计关系,包括气候和遥感相关模型[77]。它的局限性在于不涉及潜在机制的知识,仅在与其相关的数据范围内最准确。参数模型利用光合有效辐射及与其相关的调控因素,实现植被生产力的估算,因此也称为光能利用效率模型[78],目前与遥感结合的应用较为广泛[79]。过程模型则是通过生态生理过程以机械方式模拟生态系统的功能,通常需要考虑各个过程的机制以及多个因素的共同作用,能够运用于长时间、大尺度的模拟[80],包括简单过程模型、过程耦合模型和遥感-过程耦合模型。此外,模型中是否含有随机成分,例如某些参数的值随时间或个体是否变化,决定了相同初始条件和时间段对应的结果是否相同,因此也分为确定性模型和随机性模型[15]

    • 碳循环有非常丰富的建模历史,目前已经提出了各种具有不同复杂程度和侧重方向的模型[81-82]。利用模型了解和确定生态系统的主要特征和机制,并对人类活动改变生态系统中碳循环的方式(如化石燃料燃烧、施肥和开发等)进行评估,再借助于真实的观测数据验证模型的拟合度[83]。代表大气与陆地生物圈之间碳交换的模型包括多个过程和机制,其复杂性在过去几十年中不断增加,主要表现在模型过程中的细节被不断增加和完善。由于各模型所代表的过程、应用范围以及运算方式各有不同,因此不同模型之间难以比较,只能以模型输出数值的准确度来评估模型的性能[82],而不能直接在模型中实现概念和数学的评价及比较。

      滨海湿地碳循环过程主要由生物和非生物因素共同驱动,常见为基于点位的测量。而在较大空间尺度的研究中,则通常使用替代技术(如涡度协方差技术等)对长时间、大尺度的数据进行补充[84]。然而全球数据存在高度异质性,包括采样时间、试验持续时间和植被类型变化等,这些都进一步增加了滨海湿地碳交换估算的不确定性。由于滨海湿地生态系统的复杂性,经验和参数模型相比过程模型所受限制更多,因为过程模型还可通过增加相应模块建立子模型,达到对特定生态系统进行拟合的目的。同时,为了研究氮输入对滨海湿地生态系统的影响,碳循环模型中除了包含各碳库之间的相互交换,还应该包括水文、碳氮耦合过程的模块。目前在研究过程模型的领域中,满足以上要求且应用较为广泛的有DNDC(过程模型)、PEATBOG(过程模型)、TECO(过程模型)、Biome-BGC(过程模型)、AVIM(过程耦合模型)、TEM(遥感-过程耦合模型)和CENTURY(过程模型)等几种模型,或可应用于氮输入影响滨海湿地生态系统碳循环过程的模拟(表1)。

      表 1  碳循环模型的开发及其在氮输入影响中的应用

      Table 1.  Development and application in wetland of carbon cycle models

      模型名称模型类型模型概述建立年份时间步长适用范围应用案例
      Biome-BGC[85]过程模型(生物地球化学模型)模拟生态系统中植被、凋落物、土壤碳、氮、水的储量和通量,模拟木本植物、C3/C4草本植物的碳、氮、水的循环过程与交互影响19881 d常绿/落叶、针叶/阔叶林、C3/C4草本植物和灌木林,点位、区域和全球尺度增加了地下水、苔藓植被、土壤营养物质分解、土壤水分压力指数等作用机理的描述。应用于加拿大森林湿地、红壤丘陵区湿地、千烟洲人工湿地、中国南海湿地红树林等湿地生态系统净初级生产力(NPP)、生物量和土壤碳积累的模拟研究[86-89]
      CENTURY[90]过程模型(生物地球化学模型)基于土壤的结构功能,模拟碳、氮和磷的生物地球化学循环过程,同时结合气温、降水量等气候驱动因子,模拟生态系统生产力198830 d森林、草原生态系统通过调整厌氧参数,用于泥炭湿地碳动态模拟[91]
      DNDC[92]过程模型(生物地球化学模型)增加了苔藓及草本植物的生长参数,开发了地下水位动态变化、厌氧条件下土壤生物地球化学过程等算法[93]19921 d森林、农田、草地、湿地生态系统,点位和区域尺度最初建立用于描述农业生态系统,现可应用于水稻田、湿地、泥炭地等生态系统的碳氮循环研究[94-97]
      AVIM[98]过程耦合模型(大气-植被耦合模型)陆面物理-植被生理生态的有机耦合,包含植被-土壤-大气间热量和水分的交换以及植物光合-呼吸等CO2的交换,实现了大气和包括根圈在内的植物圈之间的动态相互作用19951 h森林、草地、农田、冰川、湿地、湖泊等生态系统添加土壤碳氮动态模块[99],再与其他模块相结合,已应用于研究湿地覆被类型对模拟结果的影响[100]
      TECO[101]过程模型(生物地球化学模型)具有与目前大多数生物地球化学模型相似的碳池结构和参数。经过改进和完善,可用于模拟陆地生态系统中的碳、氮和水文循环2008冠层光合作用和土壤水分动态子模型:1 h;植物生长和土壤碳转移子模型:1 d陆地生态系统调节植物和生态系统对CO2升高、变暖和降水变化的交互响应的关键过程,已应用于Duke森林应对CO2升高的固碳过程的若干研究中[102-103]以及SPRUCE泥炭地的碳动力和土壤动力学的研究中[104]
      PEATBOG[105]过程模型(生物地球化学模型)强调了土壤固、水、气相与植被之间的物质流动,土壤组分的高空间分辨率,对碳、氮通量的化学计量控制,以及对植被和土壤中碳、氮反应活性的持续概念化20131 d泥炭地碳氮耦合循环的模拟已应用于研究长期施氮对泥炭沼泽碳循环的影响分析,并模拟预测了未来80 a间各碳组分的动态趋势,以确定氮肥的潜在影响和影响模型行为的主要因素[106]
    • 滨海湿地显著区别于其他湿地的特征是周期性的潮汐作用,整个湿地在淹水-暴露中形成干湿交替的生境,土壤环境改变,最终影响湿地碳交换过程[19, 107]。同时,潮汐作用也使得富营养化的近岸水体将大量活性氮输入系统中。与单个影响因素的作用相比,2个过程的共同作用可能对湿地碳变化的影响结果有所不同。然而,已有碳循环模型对周期性潮汐水文过程的关注不足。碳循环机制取决于当前研究对碳循环过程认识的程度,一些机制性的问题依然利用经验模型解决,例如微生物分解碳速率、植物-土壤碳分配等。且碳循环模型简化了各碳库之间的交互关系,模拟相对静态的过程时效果较好,但无法解释和表达动态的过程,例如不同氮素种类或浓度对优势物种、微生物的选择等。碳动态预测要求考虑土壤、水文和植被等之间的相互作用,却很少有同时存在这些作用的且适用于湿地生态系统的综合型碳模型。虽然一些模型(如DNDC和BIOME-BGC模型)在改进过程中增加了描述湿地生态系统机理的模块[86, 108],然而,湿地生态系统碳循环过程较为复杂,兼有草本和木本植物,包括沼生植物、湿生植物和水生植物等,化学组分也存在较大差异,形成多种不同类型的湿地,改进后的模型适应性仍有待论证。例如,改良的Biome-BGC模型仍然无法模拟长期遭受洪水侵袭的真正湿地,因为它不会追踪有机土壤形成、地下水位变化、土壤氧化还原电位或厌氧过程[86]

      评估氮输入对碳储量的影响,可以通过测量固定量的氮输入下植物-土壤碳库的变化,还可追踪氮进入系统后通过氮损失途径减少的氮量及轨迹[109]。因此,氮与碳循环之间的相互作用还需进一步完善。例如在氮输入过程中,土壤碳储量的增加并不等同于植物凋落物产量的增加,还与分解速率的降低相关[110-111]。这种增加可以通过植物-土壤-微生物反馈的变化来解释,即激发效应是增加还是减少生态系统碳储量,取决于加速分解造成的土壤碳损失,以及与氮矿化增加促进的植被碳吸收之间的平衡[112]。此外,先前的建模研究证明微生物能够改善土壤碳储量预测[113],精确地估算植物和微生物生物量及其对无机氮的酶亲和力,可以更好地捕获生态系统中氮的轨迹[114]。部分模型具有隐含的微生物过程,这些过程构成了氮进入土壤有机质的主要途径[115],但模型没有明确微生物对氮的吸收和转化过程,在植物、土壤和氮素损失途径中的氮分配方面尚有不足。

      目前,在提高模型预测能力方面研究依然进展缓慢,对初始条件差异的极端敏感性,以及对系统状态描述的不完备,从根本上限制了未来预测的精确度。建模领域已经采用了多种不同的方法来改善陆地碳模型,但仍未显著减少模型预测之间的差异[109]。常见的方法是将更多的已知过程纳入影响碳循环的过程,以使模型尽可能逼真。但是,包含的过程越多,模型就越复杂且难以处理。其他方法如模型比较,虽然可以有效揭示模型预测之间差异的程度[116-117],但通常对于其起源只提供了有限的解释。但迄今为止,基准分析能提供针对标准数据集的模型性能评估[118],仅限于短时间内发生的过程(例如数天至数年)[119]。数据同化可将简单模型或模型组件直接约束于观测值[120],作为1种集成多源空间数据,它能够高效利用多种数据,但不适用于系统性的复杂模型[121]

    • 滨海湿地生态系统处于陆地与海洋之间,是能量和物质加工和转化的热点,也是生产力、碳储存/分解的热点。近岸水体富营养化引起的氮输入,将改变滨海湿地植物-土壤-大气碳分配的碳循环关键过程和碳汇功能,然而这些影响存在不确定性。相比于其他的生态系统,滨海湿地植被、土壤、水体之间的交互作用更为复杂,碳交换包括垂直和横向2个过程,因此碳循环建模需要考虑更多的因素,模拟过程中仍存在以下问题,有待进一步发展和完善:①需加强对潮汐水文过程模块的开发。虽然当前尚无将湿地水文、生物地球化学和植被相结合的综合方法,但存在有用的“构建模块”,从一组选定的源模型中组合这些关键因素可能是编译此类通用模型的可行且有效的方法[122]。②碳氮耦合机制有待进一步完善。改进植物和土壤中氮素命运的模型显示:利用植物-土壤-微生物反馈过程,能够更准确地反映土壤碳对氮输入的响应[112]。同时,增加参数或生态过程可能会增加模型预测的不确定性,为限制这种增加的不确定性,可以使用基于过程的、更加稳健且有代表性的数据集来设计和评估新的模型表现[123-124]。③提高模型模拟精度。较小规模的试验可在处理和响应变量评估中提供更高的精度[125],而较大规模的试验,诸如升温、淹水、氮输入等处理对整个生态系统规模的影响试验,在提供了更高真实性[126]的同时,也增加了模拟精度的复杂性。理想状态是将响应归因于一个整体变化的驱动因素,但试验处理与混杂的环境驱动因素(例如土壤水分、盐度、pH和氧化还原状态)可以同时控制生态系统过程,并调节全球变化驱动因素的影响。在这些不确定性下模拟不同尺度的变化,需要加强不同环境条件下,对应系统中植被、土壤等参数的研究,实现标准化测定,减少参数本地化带来的模拟误差。可尝试将多模型过程进行耦合,提高模型模拟的准确性,形成更完善的环境反馈机制。引入多时相、多传感器的遥感数据及其产品,也是在区域乃至全球尺度进行碳循环模拟的主要方向之一。同时还可以利用数据同化的方法,尽可能减少和控制数据本身及模型模拟过程中所产生的误差,提高模型的可信度和准确性。

参考文献 (126)

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