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随着第2代测序技术的发展,转录组测序(RNA-Seq)已成为植物分子生物学研究的重要手段,广泛应用于功能基因挖掘、分子标记开发、代谢通路和调控机制研究等方面[1-3]。该技术具有成本低、数据量大、效率高、准确性高等优点[4],可对组织或者细胞中所有RNA进行测序,并通过读段(reads)的拼接和丰度统计获得相应的转录本序列信息及其表达水平[5]。云锦杜鹃Rhododendron fortunei为杜鹃花科Ericaceae杜鹃花属Rhododendron植物,为中国特有种,主要分布于安徽、湖南、湖北、浙江等省[6]。云锦杜鹃叶形大,花形美丽具清香,具有较高的园艺观赏价值;适应性较强,易人工栽培,也常作为杜鹃属种间杂交的亲本;此外,枝叶等组织中含有槲皮素、山柰酚、杨梅素等有效活性成分,可开发入药[7-8]。可见,云锦杜鹃作为一种兼具观赏价值和药用价值的优良木本花卉,开发潜力巨大,具有良好的产业化前景。目前,云锦杜鹃的研究主要集中在野生资源调查[9]、群落结构[10]、无性繁殖技术[11]、有效成分分析[8, 12]、光合特性[13]、菌根共生等方面[14]。由于缺乏遗传信息,云锦杜鹃的遗传多样性、分子辅助育种等的研究较为滞后。本研究通过RNA-seq高通量测序技术对云锦杜鹃转录组进行测定,通过序列拼接、功能注释和分析,获取大量的序列信息,旨在为云锦杜鹃分子标记开发,遗传多样性分析,以及功能基因挖掘、重要性状形成分子机制等研究提供序列信息。
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分别提取无性系ZL-01组培苗根、茎和叶的RNA。检测结果表明:根RNA的质量浓度为362 mg·L-1,28S/18S为1.6,RNA完整性计数(RNA integrity number,RIN)为9.6;茎RNA的质量浓度为515 mg·L-1,28S/18S为1.8,RIN值为9.8;叶RNA的质量浓度为485 mg·L-1,28S/18S为1.8,RIN值为9.7。这些指标均符合建库测序要求,因此,将这3个组织的RNA等量混合后进行测序。
测序数据经处理后得到94 252 430个干净测序片段(clean reads),包含了14.14 Gb核苷酸序列信息,GC含量为47.58%。测序质量评估结果显示,碱基错误率为0.02%,Q20为96.70%,Q30为91.85%。这些表明该转录组的数据量和质量均较高,为后续的序列组装提供了高质量的原始数据。
通过Trintiy软件组装得到112 777个转录本,总长度为91 621 682 bp,平均长度为812.4 bp,N50为1 410,其中长度在1 kb以上的有29 225条,占25.92%;2 kb以上的10 418条,占9.24%(表 1)。对转录本进行聚类和组装得到84 633个单基因簇,总长度为58 517 298 bp,平均长度为691.4 bp,N50为1 177 bp;其中超过1 kb的有16 631条,占19.65%;超过2 kb的5 760条,占6.81%(表 1)。
表 1 云锦杜鹃转录组组装结果
Table 1. Summary of transcriptome assembly for R. fortunei
长度范围/bp 转录本/个 单基因簇/个 <301 35 575(31.54) 32 101(37.93) 301~500 25 511(22.62) 20 759(24.53) 501~1 000 22 466(19.92) 15 142(17.89) 1 001~2 000 18 807(16.68) 10 871(12.84) >2 000 10 418(9.24) 5 760(6.81) 总数 112 777 84 633 总长度 91 621 682 58 517 298 N50长度 1 410 1 177 平均长度 812.4 691.4 说明:括号内数值为占总数的百分比(%) -
将单基因簇序列与Nr,Nt,SwissProt,GO,KOG,KEGG和Pfam 7个数据库进行比对,共有35 526条单基因簇获得成功注释,占单基因簇的41.97%(表 2)。其中,30 700条单基因簇获得Nr数据库注释,占36.27%;23 215条单基因簇获得GO数据库注释,占27.43%;22 882条单基因簇获得Pfam数据库注释,占27.03%;22 202条单基因簇获得Swiss-prot数据库注释,占26.23%;18 046条单基因簇获得Nt数据库注释,占21.32%;11 085条单基因簇获得KOG数据库注释,占13.09%;9 887条单基因簇获得KEGG数据库注释占11.68%(表 2)。
表 2 云锦杜鹃单基因簇功能注释
Table 2. Annotation of unigenes in transcriptome of R. fortunei
数据库 被注释的单基因簇/条 百分比/% Nr 30 700 36.27 KEGG 9 887 11.68 Nt 18 046 21.32 SwissProt 22 202 26.23 Pfam 22 882 27.03 GO 23 215 27.43 KOG 11 085 13.09 总计 35 526 41.97 在Nr库中,云锦杜鹃转录组注释到其他物种的单基因簇基因序列共30 700条。其中与葡萄Vitis vinifera基因序列相似的最多,所占比例为24.39%;其次为中粒咖啡Coffea canephora,所占比例为7.39%;第3为可可Theobroma cacao,占6.77%;其他相似性序列数量大于3%的物种有烟草Nicotiana tomentosiformis(6.19%),毛果杨Populus trichocarpa(4.09%),甜橙Citrus sinensis(3.82%),麻疯树Jatropha curcas(3.76%)和梅花Prunus mume(3.16%),其他物种占40.43%(图 1)。
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通过GO数据库的注释,共有23 215条单基因簇获注释信息,得到119 389个GO功能注释。由分类结果可知:生物学过程(biological process)最多55 692条,占46.65%,其次是细胞组分(cellular component),35 577条,占29.80%,最少的分子功能(molecular function),有28 120条,占23.55%;这三大功能分类又可分为55个亚类,其中生物学过程23个亚类,细胞组分18个亚类,分子功能14个亚类(图 2)。生物学过程中,涉及细胞过程、代谢过程和单一有机体进程的单基因簇较多,分别有12 698,12 376和9 581条;细胞组分中涉及较多的是细胞、细胞部分和大分子复合体,分别有7 216,7 214和4 713条;分子功能中涉及较多的有结合功能和催化活性,分别有13 302,10 524条(图 2)。
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通过KOG数据库对云锦杜鹃单基因簇进行注释,结果显示有11 085条序列获得12 475个注释信息,可分为26个功能分类(图 3)。从基因功能分类来看,涉及一般功能预测的序列最多,多达1 970条;涉及翻译后修饰、蛋白翻转、分子伴侣功能的序列次之,有1 527条;而涉及核结构、胞外结构和细胞运动的序列很少,仅有37,34和5条(图 3)。
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利用KEGG注释系统对云锦杜鹃单基因簇涉及的代谢途径进行分析,结果显示:9 887条单基因簇得到15 455个注释,归属于272条通路。按获得注释的基因数量进行排序,取前20个途径,发现含有200条单基因簇以上的通路有10个,涉及碳代谢的单基因簇最多,有377条;其次是与核糖体相关的单基因簇,有364条;第3位是与氨基酸合成相关的单基因簇,有348条;涉及其他途径有内质网蛋白加工(319)、剪切体(256)、植物激素信号转导(244)、淀粉和蔗糖代谢(240)、RNA转运(227)、氧化磷酸化(224)和植物病原物相互作用(210);其他通路的单基因簇数量均在200以下(表 3)。
表 3 云锦杜鹃单基因簇的KEGG分析
Table 3. Summary KEGG pathway of R. fortunei transcriptome
KEGG通路 通路ID 单基因簇/条 碳代谢carbon metabolism ko01200 377 核糖体ribosome ko03010 364 氨基酸合成biosynthesis of amino acids ko01230 348 内质网蛋白加工protein processing in endoplasmic reticulum ko04141 319 剪切体spliceosome ko03040 256 植物激素信号转导plant hormone signal transduction ko04075 244 淀粉和蔗糖代谢starch and sucrose metabolism ko00500 240 RNA转运RNA transport ko03013 227 氧化磷酸化oxidative phosphorylation ko00190 224 植物病原物互作plant-pathogen interaction ko04626 210 内吞作用endocytosis ko04144 194 嘌呤代谢purine metabolism ko00230 193 糖酵解途径glycolysis / gluconeogenesis ko00010 184 泛素介导蛋白降解ubiquitin mediated proteolysis ko04120 174 mRNA监测通路mRNA surveillance pathway ko03015 171 苯丙素生物合成phenylpropanoid biosynthesis ko00940 169 细胞周期cell cycle ko04110 168 氨基糖和核苷酸糖代谢amino sugar and nucleotide sugar metabolism ko00520 160 嘧啶代谢pyrimidine metabolism ko00240 148 RNA降解RNA degradation ko03018 146 说明:注释数量总数为15 455 -
MADS-box基因家族在植物花分生组织形成、花器官发育等过程中发挥关键作用[16]。鉴定转录组中的MADS-box基因有助于进一步研究或调控云锦杜鹃成花过程。通过与Nr,Nt和Swiss-prot三大数据库比对,共找出编码MADS-box基因的单基因簇序列24条,分别属于10个不同的亚家族(表 4)。其中AGL17亚家族成员最多,包含c41091_g4,c39737_g1,c36841_g1,c38538_g1和c40334_g4;SQUA和SVP亚家族则各有4个成员,分别为c50592_g1,c10093_g1,c9572_g1,c2583_g1与c37773_g1,c31351_g1,c30064_g1,c33061_g2;TM3亚家族有3个成员,其他亚家族仅有2个或1个成员(表 4)。这些单基因簇的同源基因分别与花分生组织发育、花期调控、花器官发育、果实发育等重要生物学过程相关。
表 4 云锦杜鹃成花相关MADS-box基因鉴定
Table 4. Identification of Floral related MADS-box genes of R. fortunei
序列号 注释 功能 亚家族 c18022_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL15 雄蕊,心皮,胚珠和果实发育;花分生组织发育 AG c70492_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL12 花期转变 AGL12 c12164_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL15 胚胎发育 AGL15 c41091_g4 MADS-box transcription factor 27 促进开花 AGL17 c39737_g1 MADS-box transcription factor 27 促进开花 AGL17 c36841_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL21 促进开花 AGL17 c38538_g1 MADS-box transcription factor 27 促进开花 AGL17 c40334_g4 MADS-box transcription factor 27 促进开花 AGL17 c18716_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL3 花被发育;花分生组织发育 AGL2 c33061_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL9 homolog 花被发育;花分生组织发育 AGL2 c29354_g1 Floral homeotic protein DEFICIENS 花瓣和雄蕊发育 DEF c32438_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL31 花期调控;成花抑制 FLC c37758_g1 MADS-box protein FLOWERING LOCUS C 花期调控;成花抑制 FLC c50592_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL8 homolog 萼片和花瓣发育;花分生组织发育;果实发育;花期调控 SQUA c10093_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL8 homolog 萼片和花瓣发育;花分生组织发育;果实发育;花期调控 SQUA c9572_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL8 homolog 萼片和花瓣发育;花分生组织发育;果实发育;花期调控 SQUA c2583_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL8 homolog 萼片和花瓣发育;花分生组织发育;果实发育;花期调控 SQUA c37773_g1 MADS-box protein SVP 花期调控;成花抑制和激活 SVP c31351_g1 MADS-box protein SVP 花期调控;成花抑制和激活 SVP c30064_g1 MADS-box protein JOINTLESS 花期调控;成花抑制和激活 SVP c33061_g2 MADS-box protein SVP 花期调控;成花抑制和激活 SVP c73448_g1 MADS-box transcription factor 56 花期调控;成花激活 TM3 c20770_g1 MADS-box transcription factor 50 花期调控;成花激活 TM3 c5966_g1 MADS-box protein SOC1 花期调控;成花激活 TM3 -
利用MISA软件对云锦杜鹃转录组序列进行分析,共发现21 900个SSR位点,分布在17 414条单基因簇中,其中有含有1个以上SSR位点的单基因簇有3 606条(表 5)。在所有SSR位点中,双碱基重复SSR最多,有12 294个,占总数的56.14%;其次为单碱基重复SSR,有6 448个,占总数的29.44%;三碱基重复SSR有2 970个,占13.56%;四碱基重复SSR有140个,占0.63%;五碱基和六碱基重复SSR分别仅有25个和23个(表 5)。进一步分析这些SSR重复基序,可以发现,在单碱基SSR中,A/T发生频率最高;双碱基SSR中,发生频率最高的是AG/CT,其次是AC/GT;三碱基重复中发生频率最高是AAG/CTT,其次是AGG/CCT(图 4)。
表 5 云锦杜鹃转录组SSR分析结果
Table 5. Summary of SSR in R. fortunei transcriptome
搜索项目 数量/个 分析序列数量total number of sequences examined 84 633 分析序列长度total size of examined sequences(bp) 58 517 298 SSR位点总数total number of identified SSRs 21 900 包含SSR位点序列数number of SSR containing sequences 17 414 包含1个以上SSR位点序列数number of sequences containing more than 1 SSR 3 606 复合形式存在的SSR位点数number of SSRs present in compound formation 1 437 单碱基重复mono-nucleotide 6 448 二碱基重复di-nucleotide 12 294 三碱基重复tri-nucleotide 2 970 四碱基重复tetra-nucleotide 140 五碱基重复penta-nucleotide 25 六碱基重复hexa-nucleotide 23
Transcriptome sequencing and analysis of Rhododendron fortunei
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摘要: 云锦杜鹃Rhododendron fortunei具有很高的园艺观赏价值。由于缺乏相关的遗传信息,云锦杜鹃的多样性、分子辅助育种等工作进展较为缓慢。通过高通量测序技术(Illumina),对云锦杜鹃的转录组进行了测定和分析。通过测序拼接和去冗余共获得84 633条单基因簇(unigene)序列,平均长度为691.4 bp。通过与公共数据库比对成功注释到了35 526条单基因簇,其中与葡萄Vitis vinifera基因相似的序列最多。根据基因本体论数据库(GO)可将23 215个单基因簇归类于生物学过程、细胞组分及分子功能等三大类的55个功能组;真核直系同源基因数据库(KOG)将11 085条单基因簇分为26个功能分类,涉及一般功能预测的单基因簇最多,多达1 970条;以京都基因与基金组百科全书(KEGG)作为参考,依据代谢途径可将9 887个单基因簇定位到272个代谢通路。进一步分析基因注释结果,挖掘获得24个编码MADS-box基因的单基因簇分属于10个不同亚家族。此外,检测到了21 900个简单序列重复(SSR)位点,可用于SSR标记开发。
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关键词:
- 林木育种学 /
- 云锦杜鹃 /
- 转录组 /
- 基因注释 /
- 简单序列重复(SSR)
Abstract: To enhance studies on genetic diversity and molecular assistance breeding of Rhododendron fortunei, one of the native Rhododendron species in China with a high horticultural and ornamental value, the transcriptome of R. fortunei was sequenced using Illumina technology. In addition, sequence assembly, public databases, Gene Ontology (GO) analysis, Eukaryotic Orthologous Groups (KOG), Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG), and MADS-box transcription factor were used. Results of the sequence assembly obtained 84 633 unigenes with a mean length of 691.4 bp. Public databases were successfully searched annotating 35 526 unigenes, and GO analysis showed that 23 215 unigenes were potentially involved in 55 functional categories of biological processes, cellular components, and molecular functions. The KOG analysis indicated 11 085 unigenes classified into 26 functional groups; whereas, the KEGG analysis assigned 9 887 unigenes to 272 known pathways. Also, 24 unigenes were identified to encode MADS-box transcription factor belonging to 10 different subfamilies. In addition, 21 900 simple sequence repeat (SSR) loci were determined in the transcriptome of R. fortunei. In conclusion, this study could provide an important foundation for genetic diversity analysis, marker development, molecular assistant breeding, and functional gene isolation in R. fortunei, as well as future SSR marker development.-
Key words:
- forest tree breeding /
- Rhododendron fortunei /
- transcriptome /
- gene annotation /
- SSR
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表 1 云锦杜鹃转录组组装结果
Table 1. Summary of transcriptome assembly for R. fortunei
长度范围/bp 转录本/个 单基因簇/个 <301 35 575(31.54) 32 101(37.93) 301~500 25 511(22.62) 20 759(24.53) 501~1 000 22 466(19.92) 15 142(17.89) 1 001~2 000 18 807(16.68) 10 871(12.84) >2 000 10 418(9.24) 5 760(6.81) 总数 112 777 84 633 总长度 91 621 682 58 517 298 N50长度 1 410 1 177 平均长度 812.4 691.4 说明:括号内数值为占总数的百分比(%) 表 2 云锦杜鹃单基因簇功能注释
Table 2. Annotation of unigenes in transcriptome of R. fortunei
数据库 被注释的单基因簇/条 百分比/% Nr 30 700 36.27 KEGG 9 887 11.68 Nt 18 046 21.32 SwissProt 22 202 26.23 Pfam 22 882 27.03 GO 23 215 27.43 KOG 11 085 13.09 总计 35 526 41.97 表 3 云锦杜鹃单基因簇的KEGG分析
Table 3. Summary KEGG pathway of R. fortunei transcriptome
KEGG通路 通路ID 单基因簇/条 碳代谢carbon metabolism ko01200 377 核糖体ribosome ko03010 364 氨基酸合成biosynthesis of amino acids ko01230 348 内质网蛋白加工protein processing in endoplasmic reticulum ko04141 319 剪切体spliceosome ko03040 256 植物激素信号转导plant hormone signal transduction ko04075 244 淀粉和蔗糖代谢starch and sucrose metabolism ko00500 240 RNA转运RNA transport ko03013 227 氧化磷酸化oxidative phosphorylation ko00190 224 植物病原物互作plant-pathogen interaction ko04626 210 内吞作用endocytosis ko04144 194 嘌呤代谢purine metabolism ko00230 193 糖酵解途径glycolysis / gluconeogenesis ko00010 184 泛素介导蛋白降解ubiquitin mediated proteolysis ko04120 174 mRNA监测通路mRNA surveillance pathway ko03015 171 苯丙素生物合成phenylpropanoid biosynthesis ko00940 169 细胞周期cell cycle ko04110 168 氨基糖和核苷酸糖代谢amino sugar and nucleotide sugar metabolism ko00520 160 嘧啶代谢pyrimidine metabolism ko00240 148 RNA降解RNA degradation ko03018 146 说明:注释数量总数为15 455 表 4 云锦杜鹃成花相关MADS-box基因鉴定
Table 4. Identification of Floral related MADS-box genes of R. fortunei
序列号 注释 功能 亚家族 c18022_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL15 雄蕊,心皮,胚珠和果实发育;花分生组织发育 AG c70492_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL12 花期转变 AGL12 c12164_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL15 胚胎发育 AGL15 c41091_g4 MADS-box transcription factor 27 促进开花 AGL17 c39737_g1 MADS-box transcription factor 27 促进开花 AGL17 c36841_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL21 促进开花 AGL17 c38538_g1 MADS-box transcription factor 27 促进开花 AGL17 c40334_g4 MADS-box transcription factor 27 促进开花 AGL17 c18716_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL3 花被发育;花分生组织发育 AGL2 c33061_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL9 homolog 花被发育;花分生组织发育 AGL2 c29354_g1 Floral homeotic protein DEFICIENS 花瓣和雄蕊发育 DEF c32438_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL31 花期调控;成花抑制 FLC c37758_g1 MADS-box protein FLOWERING LOCUS C 花期调控;成花抑制 FLC c50592_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL8 homolog 萼片和花瓣发育;花分生组织发育;果实发育;花期调控 SQUA c10093_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL8 homolog 萼片和花瓣发育;花分生组织发育;果实发育;花期调控 SQUA c9572_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL8 homolog 萼片和花瓣发育;花分生组织发育;果实发育;花期调控 SQUA c2583_g1 Agamous-like MADS-box protein AGL8 homolog 萼片和花瓣发育;花分生组织发育;果实发育;花期调控 SQUA c37773_g1 MADS-box protein SVP 花期调控;成花抑制和激活 SVP c31351_g1 MADS-box protein SVP 花期调控;成花抑制和激活 SVP c30064_g1 MADS-box protein JOINTLESS 花期调控;成花抑制和激活 SVP c33061_g2 MADS-box protein SVP 花期调控;成花抑制和激活 SVP c73448_g1 MADS-box transcription factor 56 花期调控;成花激活 TM3 c20770_g1 MADS-box transcription factor 50 花期调控;成花激活 TM3 c5966_g1 MADS-box protein SOC1 花期调控;成花激活 TM3 表 5 云锦杜鹃转录组SSR分析结果
Table 5. Summary of SSR in R. fortunei transcriptome
搜索项目 数量/个 分析序列数量total number of sequences examined 84 633 分析序列长度total size of examined sequences(bp) 58 517 298 SSR位点总数total number of identified SSRs 21 900 包含SSR位点序列数number of SSR containing sequences 17 414 包含1个以上SSR位点序列数number of sequences containing more than 1 SSR 3 606 复合形式存在的SSR位点数number of SSRs present in compound formation 1 437 单碱基重复mono-nucleotide 6 448 二碱基重复di-nucleotide 12 294 三碱基重复tri-nucleotide 2 970 四碱基重复tetra-nucleotide 140 五碱基重复penta-nucleotide 25 六碱基重复hexa-nucleotide 23 -
[1] UNAMBA C I N, AKSHAY N, SHARMA R K. Next generation sequencing technologies:the doorway to the unexplored genomics of non-model plants[J]. Front Plant Sci, 2015, 6:1074. [2] PARAMPREET K, KISHOR G. From genomes to GENE-omes:exome sequencing concept and applications in crop improvement[J]. Front Plant Sci, 2017, 8:2164. [3] ZHANG Yue, ZHANG Xue, WANG Yuehua, et al. De novo assembly of transcriptome and development of novel EST-SSR markers in Rhododendron rex Lévl. through Illumina Sequencing[J]. Front Plant Sci, 2017, 8:1664. [4] COSTA V, ANGELINI C, de FEIS I, et al. Uncovering the complexity of transcriptomes with RNA-Seq[J]. J Biomed Biotechnol, 2010:853916. doi:10.1155/2010/853916. [5] WANG Zhong, GERSTEIN M, SNYDER M. RNA-Seq:a revolutionary tool for transcriptomics[J]. Nat Rev Genet, 2009, 10(1):57-63. [6] WU Zhengyi, RAVEN P, HONG D Y. Flora of China:Vol 14[M]. Beijing:Science Press, 2005:260-455. [7] 曾红, 钱慧琴, 梁兆昌, 等.云锦杜鹃枝叶化学成分研究[J].中草药, 2013, 44(22):3123-3126. ZENG Hong, QIAN Huiqin, LIANG Zhaochang, et al. Chemical constituents in twigs and leaves of Rhododendron fortunei[J]. Chin Med Mat, 2013, 44(22):3123-3126. [8] LAI Yongqi, ZENG Hong, HE Meijun, et al. 6, 8-Di-C-methyl-flavonoids with neuroprotective activities from Rhododendron fortunei[J]. Fitoterapia, 2016, 112:237-243. [9] 徐晓锋, 潘德月, 陈江芳, 等.浙江大盘山杜鹃花属植物资源及其保护与利用[J].中国野生植物资源, 2017, 36(1):58-61. XU Xiaofeng, PAN Deyue, CHEN Jiangfang, et al. Study on rxploitation and utilization of Rhododendron Linn. in Dapanshan, Zhejiang Province[J]. Chin Wild Plant Resour, 2017, 36(1):58-61. [10] 邓贤兰, 刘鹏, 吴杨, 等.井冈山云锦杜鹃群落特征研究[J].亚热带植物科学, 2011, 40(4):20-25. DENG Xianlan, LIU Peng, WU Yang, et al. Studies on the community characteristics of Rhododendron fortunei in Jinggang Mountain[J]. Subtrop Plant Sci, 2011, 40(4):20-25. [11] 王书胜, 单文, 张乐华, 等.基质和IBA浓度对云锦杜鹃扦插生根的影响[J].林业科学, 2015, 51(9):165-172. WANG Shusheng, SHAN Wen, ZHANG Lehua, et al. Effects of media and IBA concentrations on rooting of Rhododendron fortunei for cutting propagation[J]. Sci Silv Sin, 2015, 51(9):165-172. [12] 李钧敏, 金则新, 杨蓓芬.云锦杜鹃总黄酮含量及成分分析[J].西北林学院学报, 2004, 19(1):110-112. LI Junmin, JIN Zexin, YANG Beifen. The content and analysis of the components of flavonoids in Rhododendron fortunei[J]. J Northwest For Univ, 2004, 19(1):110-112. [13] 柯世省, 杨敏文.水分胁迫对云锦杜鹃光合生理和光温响应的影响[J].园艺学报, 2007, 34(4):959-964. KE Shisheng, YANG Minwen. Effects of water stress on photosynthetic physiological characteristics in leaves of Rhododendron fortunei and their response to light and temperature[J]. Acta Hortic Sin, 2007, 34(4):959-964. [14] WEI Xiangying, CHEN Jianjun, ZHANG Chunying, et al. Differential gene expression in Rhododendron fortunei roots colonized by an ericoid mycorrhizal fungus and increased nitrogen absorption and plant growth[J]. Front Plant Sci, 2016, 7:1594. [15] GRABHEER M G, HAAS B J, YASSOUR M, et al. Full-length transcriptome assembly from RNA-Seq data without a reference genome[J]. Nat Biotechnol, 2011, 29:644-652. [16] KRIZEK B A, FLETCHER J C. Molecular mechanisms of flower development:an armchair guide[J]. Nat Rev Genet, 2005, 6(9):688-698. [17] FENG Chao, CHEN Ming, XU Changjie, et al. Transcriptomic analysis of Chinese bayberry (Myrica rubra) fruit development and ripening using RNA-Seq[J]. BMC Genomies, 2012, 13(1):19. [18] XU Wei, CUI Qinghua, LI Fei, et al. Transcriptome-wide identification and characterization of MicroRNAs from castor bean (Ricinus communis L.)[J]. PLoS One, 2013, 8(7):e69995. doi:10.1371/journal.pone.0069995. [19] CHEN Chunling, XU Meilong, WANG Wenwen, et al. Characterization of the Lycium barbarum fruit transcriptome and development of EST-SSR markers[J]. PLoS One, 2017, 12(11):e0187738. doi:10.1371/journal.pone.0187738. [20] 黄玉兰, 殷奎德, 向君亮.薏苡幼苗叶片转录组分析[J].农业生物技术学报, 2017, 25(3):386-396. HUANG Yulan, YIN Kuide, XIANG Junliang. Analysis transcriptome of coix (Coix lachryma-jobi) leaf at seedling stage[J]. J Agric Biotech, 2017, 25(3):386-396. [21] YANG Yanhui, LI Mingjie, YI Yanjie, et al. The root transcriptome of Achyranthes bidentata and the identification of the genes involved in the replanting benefit[J]. Plant Cell Rep, 2018, 37(4):611-625. [22] ZHANG Linsen, YANG Xiaoni, QI Xiangning, et al. Characterizing the transcriptome and microsatellite markers for almond (Amygdalus communis L.) using the Illumina sequencing platform[J]. Hereditas, 2018, 155(1):14. [23] 刘莉, 舒江平, 韦宏金, 等.东亚特有珍稀蕨类植物岩穴蕨(碗蕨科)高通量转录组测序及分析[J].生物多样性, 2016, 24(12):1325-1334. LIU Li, SU Jiangping, WEI Hongjin, et al. De novo transcriptome analysis of the rare fern Monachosorum maximowiczii (Dennstaedtiaceae) endemic to East Asia[J]. Biodivers Sci, 2016, 24(12):1325-1334. [24] 张少平, 邱珊莲, 郑云云, 等.紫色黄秋葵转录组功能基因测序及分析[J].核农学报, 2017, 31(4):643-653. ZHANG Shaoping, QIU Shanlian, ZHENG Yunyun, et al. The purple Abelmoschus esculentus transcriptome as a source for gene sequence information[J]. Acta Agric Nucl Sin, 2017, 31(4):643-653. [25] 罗冉, 吴委林, 张旸, 等. SSR分子标记在作物遗传育种中的应用[J].基因组学与应用生物学, 2010, 29(1):137-143. RUO Ran, WU Weilin, ZHANG Yang, et al. SSR marker and its application to crop genetics and breeding[J]. Genom Appl Biol, 2010, 29(1):137-143. [26] CHEN Honglin, WANG Lixia, LIU Xiaoyan, et al. De novo transcriptomic analysis of cowpea (Vigna unguiculata L. Walp.) for genic SSR marker development[J]. BMC Genet, 2017, 18(1):65. [27] 张敏, 周彩红, 陈焘, 等.榧树转录组SSR信息分析及其分子标记开发[J].果树学报, 2017, 34(10):1258-1265. ZHANG Min, ZHOU Caihong, CHEN Tao, et al. Analysis of SSR information in transcriptome and development of molecular markers in Torreya grandis[J]. J Fruit Sci, 2017, 34(10):1258-1265. -
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