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黑果枸杞Lycium ruthenicum是茄科Solanaceae枸杞属Lycium植物,主要分布在中国西北地区[1],野生种质资源非常丰富,耐干旱耐盐碱;其果实富含类黄酮、花青素、多糖、酚酸和脂肪酸等生物活性物质,具有预防多种疾病的功效[2],深受消费者喜爱。目前,对黑果枸杞果实活性物质的研究较多[2-3]。也有研究利用扩增片段长度多态性(AFLP)[4],简单重复序列间扩增多态性(ISSR)[5]和相关序列扩增多态性(SRAP)[6]标记进行遗传多样性评价,但鲜有利用简单重复序列(SSR)标记的报道。SSR标记是基于生物基因组中由1~6个核苷酸组成的串联重复序列特性开发的分子标记,具有多态性丰富、高通量检测、共显性遗传等优点,已广泛应用遗传图谱构建、分子标记辅助育种、种质资源鉴定和遗传多样性分析等[7-10]领域。由于缺乏基因组信息,基于基因组测序开发黑果枸杞SSR标记成本高,步骤繁琐[11-12],SSR标记在黑果枸杞种质资源研究中的应用受到限制。同时,美国生物技术信息中心(NCBI)中公布的黑果枸杞表达序列标签(EST)极少,除了CHEN等[16]研究了基于盐胁迫下黑果枸杞转录组表达序列标签-简单重复序列(EST-SSR)标记开发之外,基于转录组测序黑果枸杞EST-SSR标记开发尚未见报道。EST-SSR来源于表达的基因组区域,可直接反映相关基因多样性,在不同物种间具有良好的通用性;随着高通量测序技术和生物信息学方法快速发展,基于转录组测序已开发刺梨Rosa roxburghii,中国樱桃Cerasus pseudocerasus,马铃薯Solanum tuberosum等[13-15]多种植物的SSR标记。本研究以前期黑果枸杞抗旱转录组测序获得的数据为基础,利用生物信息学方法批量开发EST-SSR标记,并分析其分布特点、组成特征,以期为黑果枸杞种质资源遗传多样性分析研究提供参考。
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取1年生黑果枸杞持续干旱胁迫下的叶和根,提取RNA后进行转绿组测序(无参,HiSeqTM2500,北京诺禾致源生物信息科技有限公司),共12个样本,计80 G数据。利用Trinnity等软件[17]对测序的数据进行拼接和组装,获得213 058条单基因簇(unigene)作为背景数据进行分析。
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用于SSR引物筛选及评价的24份枸杞种质资源(表 1)均来自宁夏农林科学院国家枸杞工程技术研究中心枸杞种质资源圃(38°38′49″N,106°9′10″E)。利用天根试剂盒(DP5-02,天根)提取基因组DNA。
表 1 供试种质材料信息
Table 1. Information of twenty-four materials used in this study
序号 种质名称 果实颜色 1 ‘宁杞1号’ Lycium bararum ‘Ningqi 1’ 红色 2 ‘宁杞2号’ L. bararum ‘Ningqi 2’ 红色 3 ‘宁杞5号’ L. bararum ‘Ningqi 5’ 红色 4 ‘宁杞7号’ L. bararum ‘Ningqi 7’ 红色 5 ‘宁杞菜1号’ L. bararum ‘Ningqicai 1’ 红色 6 ‘宁农杞1号’ L. bararum ‘Ningnongqi 1’ 红色 7 ‘宁农杞2号’ L. bararum ‘Ningnongqi 2’ 红色 8 ‘宁农杞3号’ L. bararum ‘Ningnongqi 3’ 红色 9 ‘宁农杞9号’ L. bararum ‘Ningnongqi 9’ 红色 10 ‘蒙杞1号’ L. bararum ‘Mengqi 1’ 红色 11 ‘蒙杞2号’ L. bararum ‘Mengqi 2’ 红色 12 ‘天精3号’ (拉丁名未知) 红色 13 黑果枸杞L. ruthenicum 黑色 14 中国枸杞L. chincnse 红色 15 昌吉枸杞L. changjicum 褐色 16 新疆枸杞L. daystemum 红色 17 ‘HGB’ L.bararum ‘HGB’ 黄色 18 SC-09(拉丁名未知) 红色 19 HB-09(拉丁名未知) 红色 20 DHG(拉丁名未知) 黄色 21 AN-YN-01(拉丁名未知) 红色 22 W-12-30(拉丁名未知) 黄色 23 W-12-27(拉丁名未知) 黄色 24 W-11-15(拉丁名未知) 黄色 说明:1-12为栽培品种,13-24为野生资源 -
使用MISA软件(http://pgrc.ipk-gatersleben.de/misa/misa.html)搜索Unigene序列的SSR位点。搜索标准为:重复单元长度1~6 bp,单核苷酸重复次数≥10次,二核苷酸重复次数≥6次,三、四、五、六核苷酸重复次数≥5次,复合型SSR位点碱基间隔≤100 bp。
采用BatchPrimer 3软件(https://probes.pw.usda.gov/batchprimer3/)对获得的SSR位点批量设计引物。引物设计参数为:引物长度18~27 bp(最佳22 bp),GC为40%~70%(最适50%),退火温度为50~60 ℃(最适55 ℃),PCR扩增产物长度为100~300 bp,其他参数为默认设置。
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随机挑选128对引物,在上游引物5′端添加18 bp的M13通用引物序列(TGTAAAACGACGGCCAGT),3′端保持不变,用FAM荧光集团修饰后,由英潍捷基贸易有限公司合成。
PCR扩增体系(15.0 μL):DNA模板1.0 μL,M13通用荧光引物0.1 μL,上游引物和下游引物各0.4 μL,2×Taq PCR Master Mix 7.5 μL,双蒸水5.6 μL。PCR扩增在ABI-2720(应用生物系统公司,美国)上进行。扩增程序为:95 ℃ 5 min;95 ℃ 30 s,60~45 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,15个循环;95 ℃ 30 s,50 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,20个循环;72 ℃ 7 min。扩增产物经过ABI3730XL DNA(应用生物系统公司,美国)检测,用LIZ500作为分子量内标。
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以SSR出现频率和SSR平均分布距离描述EST-SSR。公式如下:①SSR出现频率fc=c/n×100%,其中c为搜索到的SSR数量(个),n为无余EST数量(个)。②SSR平均分布距离fN=N/c,其中N为无余EST数量的总碱基数(个)。由GeneMapper 4.0软件获得扩增产物片段大小,用DataFormater 2.7软件[18]将数据转化为PowerMarker v3.25软件[19]的输入格式,计算等位基因数(number of alleles,NA)、主效等位基因频率(major allele frequency, fMA)、期望杂合度(expected heterozygosity,HE)、观察杂合度(observed heterozygosity,HO)和多态信息量(polymorphism information content,CPI)。
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利用MISA软件对黑果枸杞转录组测序获得的213 058条Unigene(序列总长度为262 643 598 bp)序列进行搜索,发现其中56 170条Unigene序列中含有73 896个SSR位点,其中13 611条Unigene含有2个或2个以上EST-SSR位点。总体上,SSR发生频率为26.36%,平均3.55 kb出现1个SSR位点。SSR类型丰富,单核苷酸至六核苷酸重复类型均存在;单核苷酸、二核苷酸和三核苷酸重复出现频率占优势,分别占总SSR的74.33%,13.30%和11.81%;四核苷酸、五核苷酸和六核苷酸重复类型数量较少,分别占总数的0.49%,0.03%和0.04%(表 2)。
表 2 黑果枸杞转录组SSR数量、类型和频率
Table 2. Frequencies of the different SSR repeat motif types observed in the Lyciurn ruthenicum transcriptome
重复类型 不同重复次数下SSR数量/条 总数/条 百分比/% 5 6 7 8 9 10 > 10次 单核苷酸 20 340 34 587 54 927 74.33 二核苷酸 3 661 2 116 1 502 1 282 970 298 9 829 13.30 三核苷酸 5 285 2 414 982 39 1 1 4 8 726 11.81 四核苷酸 317 32 5 2 1 3 360 0.49 五核苷酸 13 1 5 1 1 21 0.03 六核苷酸 16 9 2 2 4 33 0.04 总数 5 631 6 117 3 110 1 546 1 284 21 311 34 897 73 896 百分比/R 7.62 8.28 4.21 2.09 1.74 28.84 47.22 100.00 -
从黑果枸杞转录组SSR核苷酸基序重复类型来看,73 896个SSR位点共有84种重复基元,单核苷酸至六核苷酸重复分别有2,4,10,26,18和24种。从出现的频率来看(表 3):占优势的前3种重复单元类型是单核苷酸、二核苷酸和三核苷酸重复基元;单核苷酸重复基元以A/T为主,占该类型SSR位点总数的95.64%;二核苷酸主要以AG/CT为主,占二核苷酸总数的40.42%,其次是AT/AT,AC/GT和CG/CG,分别所占比例为35.37%,23.74%和0.46%;三核苷酸重复单元以AAC/GTT,AAG/CTT,AAT/ATT,ATC/ATG和ACC/GGT为主,占所有三核苷酸重复单元的75.88%;四核苷酸、五核苷酸和六核苷酸重复单元类型较为分散,出现频率相对较低,仅为0.56%。
表 3 黑果枸杞EST-SSR中重复基元的类型、数量及频率
Table 3. Number and frequencies of repeat motif types in Lycium ruthenicum
重复基序类型 数量/条 占该类型SSR比例/% 占总SSR比例/% A/T 52 531 95.64 71.09 C/G 2 396 4.36 3.24 AC/GT 2 333 23.74 3.16 AG/CT 3 973 40.42 5.38 AT/AT 3 477 35.37 4.71 CG/CG 46 0.47 0.06 AAC/GTT 2 108 24.16 2.85 AAG/CTT 1 865 21.37 2.52 AAT/ATT 1 035 11.86 1.40 ACC/GGT 635 7.28 0.86 ACG/CGT 174 1.99 0.24 ACT/AGT 319 3.66 0.43 AGC/CTG 597 6.84 0.81 AGG/CCT 424 4.86 0.57 ATC/ATG 978 11.21 1.32 CCG/CGG 591 6.77 0.80 其他类型 414 0.56 -
为检测所开发的EST-SSR标记的可用性,对56 170条Unigene序列的73 896个EST-SSR位点设计引物,共得到引物12 674对。随机挑选128对(包括二核苷酸、三核苷酸、四核苷酸、五核苷酸和六核苷酸),以表型性状差异较大的‘黑果枸杞’‘宁杞1号’‘宁杞菜1号’和‘中国枸杞’的DNA为模板进行PCR扩增,其中74对引物能扩增出清晰的扩增产物,引物扩增有效率为57.8%;其中28对引物具有多态性,多态性引物占有效引物的37.8%。图 1为引物LM-02对4份种质的基因型图。
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以筛选的28对多态性引物对24份枸杞种质作遗传多样性分析。共检测到等位基因256个,各引物检测到的等位基因为4~19个,平均为9.1个;共检测到基因型数303个;主效等位基因频率变化范围为0.188~0.729,平均值为0.432;观察杂合度为0.167~0.833,平均值为0.439;期望杂合度为0.433~0.904,平均值为0.712,多态信息量为0.395~0.897,平均值为0.678。由Botstein理论[20]判定(表 4),在开发出的28个多态位点中有24个高度多态位点(CPI≥0.5),4个中度多态位点(0.25≤CPI < 0.5)。
表 4 28对EST-SSR引物对枸杞种质的遗传多样性检测
Table 4. Genetic diversity of 24 wolfberry germplasm revealed by 28 EST-SSR markers
引物名称 等位基因数 主效等位基因频中 期望杂合度 观察杂合度 多态信息量 LM-02 6 0.458 0.6831 0.458 0.634 LM-04 8 0.375 0.773 0.250 0.743 LM-05 10 0.438 0.747 0.292 0.722 LM-08 8 0.5CX) 0.682 0.458 0.647 LM-20 9 0.250 0.805 0.292 0.777 LM-22 10 0.5CX) 0.697 0.542 0.669 LM-28 9 0.250 0.835 0.417 0.815 LM-30 15 0.250 0.882 0.542 0.873 LM-33 8 0.542 0.655 0.500 0.622 LM-42 4 0.729 0.433 0.167 0.395 LM-43 4 0.646 0.513 0.583 0.454 LM-50 4 0.646 0.484 0.417 0.402 LM-51 7 0.583 0.615 0.542 0.584 LM-56 15 0.229 0.872 0.542 0.861 LM-61 10 0.479 0.722 0.167 0.699 LM-64 11 0.438 0.769 0.667 0.753 LM-68 7 0.354 0.724 0.333 0.680 LM-71 9 0.3% 0.760 0.458 0.730 LM-75 7 0.521 0.586 0.250 0.508 LM-86 6 0.583 0.602 0.292 0.560 LM-96 7 0.417 0.745 0.667 0.712 LM-99 11 0.333 0.819 0.375 0.800 LM-101 5 0.667 0.481 0.458 0.414 LM-110 15 0.250 0.876 0.708 0.865 LM-111 19 0.188 0.904 0.542 0.897 LM-112 7 0.500 0.591 0.250 0.511 LM-114 12 0.313 0.832 0.292 0.814 LM-125 13 0.271 0.854 0.833 0.840 平均值 9.1 0.432 0.712 0.439 0.678
SSR information in transcriptome and development of molecular markers in Lycium ruthenicum
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摘要: 分析黑果枸杞Lycium ruthenicum转录组中简单重复序列(SSR)位点信息,开发SSR分子标记。采用MISA软件在黑果枸杞转录组中共检测到73 896个SSR位点,分布于56 170条单基因簇(unigenes)中,出现频率为26.36%,平均分布距离为3.55 kb。优势重复基序为单核苷酸、二核苷酸和三核苷酸,分别占总SSR位点的74.33%,13.30%和11.81%;共发现84种重复基序,重复次数为5~33次,其中出现频率最高的基序为A/T,AG/CT,AT/AT,C/G和AAC/GTT。针对SSR位点设计了12 674对引物,随机挑选128对引物进行多态性验证,其中74对(57.8%)得到清晰的扩增产物;用其中的28对高多态性引物对24份枸杞种质进行扩增,共检测到等位基因256个,平均为9.1个。平均主效等位基因频率、观察杂合度、期望杂合度和多态信息量分别为0.432,0.439,0.712和0.678。以上结果表明:基于黑果枸杞转录组测序得到的Unigene信息可作为开发SSR标记的有效来源,获得的大批量SSR标记可为枸杞遗传多样性分析和遗传图谱构建提供可靠的标记选择。
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关键词:
- 林木育种学 /
- 黑果枸杞 /
- 转录组 /
- 简单重复序列(SSR)
Abstract: The objective was to analyze Simple Sequence Repeat (SSR) loci information and to develop SSR molecular markers in Lycium ruthenicum (wolfberry) for further analysis with genetic diversity. A total of 73 896 SSRs were identified in L. ruthenicum transcriptome by MISA software, and primer pairs were designed from the SSR loci by BatchPrimer 3 software. Results showed that distribution was in 56 170 unigenes with a frequency of 26.36% and an average density of one SSR per 3.55 kb. Among these SSR loci, the most abundant motifs were mononucleotide (74.33%), dinucleotide (13.30%), and trinucleotide (11.81%) repeat types. Among 73 896 SSR loci, 84 repeat motifs with iteration numbers from 5 to 33 were discovered. The most abundant repeat motifs were A/T, AG/CT, AT/AT, C/G, and AAC/GTT. A total of 12 674 primer pairs were designed from the SSR loci by BatchPrimer 3 software, and 128 primers pairs of randomly selected SSR were validated, of which 74 (57.8%) pairs of primers were able to produce Polymerase Chain Reaction (PCR) products. Among the 74 SSR loci, 28 high polymorphic SSR loci were used to amplify 24 accessions of wolfberry germplasm. A total of 256 alleles were detected for an average of 9.1. The average major allele frequency (0.432), observed heterozygosity (0.439), expected heterozygosity (0.712), and polymorphism information content (PIC) (0.678) were noted. Thus, the development of SSR markers based on the transcriptome of L. ruthenicum could provide reliable marker selection for genetic diversity analysis and genetic map construction of wolfberry germplasm.-
Key words:
- forest tree breeding /
- Lycium ruthenicum /
- transcriptome /
- SSR
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表 1 供试种质材料信息
Table 1. Information of twenty-four materials used in this study
序号 种质名称 果实颜色 1 ‘宁杞1号’ Lycium bararum ‘Ningqi 1’ 红色 2 ‘宁杞2号’ L. bararum ‘Ningqi 2’ 红色 3 ‘宁杞5号’ L. bararum ‘Ningqi 5’ 红色 4 ‘宁杞7号’ L. bararum ‘Ningqi 7’ 红色 5 ‘宁杞菜1号’ L. bararum ‘Ningqicai 1’ 红色 6 ‘宁农杞1号’ L. bararum ‘Ningnongqi 1’ 红色 7 ‘宁农杞2号’ L. bararum ‘Ningnongqi 2’ 红色 8 ‘宁农杞3号’ L. bararum ‘Ningnongqi 3’ 红色 9 ‘宁农杞9号’ L. bararum ‘Ningnongqi 9’ 红色 10 ‘蒙杞1号’ L. bararum ‘Mengqi 1’ 红色 11 ‘蒙杞2号’ L. bararum ‘Mengqi 2’ 红色 12 ‘天精3号’ (拉丁名未知) 红色 13 黑果枸杞L. ruthenicum 黑色 14 中国枸杞L. chincnse 红色 15 昌吉枸杞L. changjicum 褐色 16 新疆枸杞L. daystemum 红色 17 ‘HGB’ L.bararum ‘HGB’ 黄色 18 SC-09(拉丁名未知) 红色 19 HB-09(拉丁名未知) 红色 20 DHG(拉丁名未知) 黄色 21 AN-YN-01(拉丁名未知) 红色 22 W-12-30(拉丁名未知) 黄色 23 W-12-27(拉丁名未知) 黄色 24 W-11-15(拉丁名未知) 黄色 说明:1-12为栽培品种,13-24为野生资源 表 2 黑果枸杞转录组SSR数量、类型和频率
Table 2. Frequencies of the different SSR repeat motif types observed in the Lyciurn ruthenicum transcriptome
重复类型 不同重复次数下SSR数量/条 总数/条 百分比/% 5 6 7 8 9 10 > 10次 单核苷酸 20 340 34 587 54 927 74.33 二核苷酸 3 661 2 116 1 502 1 282 970 298 9 829 13.30 三核苷酸 5 285 2 414 982 39 1 1 4 8 726 11.81 四核苷酸 317 32 5 2 1 3 360 0.49 五核苷酸 13 1 5 1 1 21 0.03 六核苷酸 16 9 2 2 4 33 0.04 总数 5 631 6 117 3 110 1 546 1 284 21 311 34 897 73 896 百分比/R 7.62 8.28 4.21 2.09 1.74 28.84 47.22 100.00 表 3 黑果枸杞EST-SSR中重复基元的类型、数量及频率
Table 3. Number and frequencies of repeat motif types in Lycium ruthenicum
重复基序类型 数量/条 占该类型SSR比例/% 占总SSR比例/% A/T 52 531 95.64 71.09 C/G 2 396 4.36 3.24 AC/GT 2 333 23.74 3.16 AG/CT 3 973 40.42 5.38 AT/AT 3 477 35.37 4.71 CG/CG 46 0.47 0.06 AAC/GTT 2 108 24.16 2.85 AAG/CTT 1 865 21.37 2.52 AAT/ATT 1 035 11.86 1.40 ACC/GGT 635 7.28 0.86 ACG/CGT 174 1.99 0.24 ACT/AGT 319 3.66 0.43 AGC/CTG 597 6.84 0.81 AGG/CCT 424 4.86 0.57 ATC/ATG 978 11.21 1.32 CCG/CGG 591 6.77 0.80 其他类型 414 0.56 表 4 28对EST-SSR引物对枸杞种质的遗传多样性检测
Table 4. Genetic diversity of 24 wolfberry germplasm revealed by 28 EST-SSR markers
引物名称 等位基因数 主效等位基因频中 期望杂合度 观察杂合度 多态信息量 LM-02 6 0.458 0.6831 0.458 0.634 LM-04 8 0.375 0.773 0.250 0.743 LM-05 10 0.438 0.747 0.292 0.722 LM-08 8 0.5CX) 0.682 0.458 0.647 LM-20 9 0.250 0.805 0.292 0.777 LM-22 10 0.5CX) 0.697 0.542 0.669 LM-28 9 0.250 0.835 0.417 0.815 LM-30 15 0.250 0.882 0.542 0.873 LM-33 8 0.542 0.655 0.500 0.622 LM-42 4 0.729 0.433 0.167 0.395 LM-43 4 0.646 0.513 0.583 0.454 LM-50 4 0.646 0.484 0.417 0.402 LM-51 7 0.583 0.615 0.542 0.584 LM-56 15 0.229 0.872 0.542 0.861 LM-61 10 0.479 0.722 0.167 0.699 LM-64 11 0.438 0.769 0.667 0.753 LM-68 7 0.354 0.724 0.333 0.680 LM-71 9 0.3% 0.760 0.458 0.730 LM-75 7 0.521 0.586 0.250 0.508 LM-86 6 0.583 0.602 0.292 0.560 LM-96 7 0.417 0.745 0.667 0.712 LM-99 11 0.333 0.819 0.375 0.800 LM-101 5 0.667 0.481 0.458 0.414 LM-110 15 0.250 0.876 0.708 0.865 LM-111 19 0.188 0.904 0.542 0.897 LM-112 7 0.500 0.591 0.250 0.511 LM-114 12 0.313 0.832 0.292 0.814 LM-125 13 0.271 0.854 0.833 0.840 平均值 9.1 0.432 0.712 0.439 0.678 -
[1] 韩丽娟, 叶英, 索有瑞.黑果枸杞资源分布及其经济价值[J].中国野生植物资源, 2014, 33(6):55-57. HAN Lijuan, YE Ying, SUO Yourui. The resource and economic value of Lycium ruthenicum Murray[J]. Chin Wild Plant Res, 2014, 33(6):55-57. [2] WANG Hanqing, LI Jiaoning, TAO Weiwei, et al. Lycium ruthenicum studies:molecular biology, phytochemistry and pharmacology[J]. Food Chem, 2018, 240:759-666. [3] WU Tao, LÜ Haiyang, WANG Fengzhong, et al. Characterization of polyphenols from Lycium ruthenicum fruit by UPLC-Q-TOF/MSE and their antioxidant activity in Caco-2 Cells[J]. J Agric Food Chem, 2016, 64(11):2280-2288. [4] 王锦楠, 陈进福, 陈武生, 等.柴达木地区野生黑果枸杞种群遗传多样性的AFLP分析[J].植物生态学报, 2015, 39(10):1003-1011. WANG Jinnan, CHEN Jinfu, CHEN Wusheng, et al. Population genetic diversity of wild Lycium ruthenicum in Qaidam inferred from AFLP markers[J]. Chin J Plant Ecol, 2015, 39(10):1003-1011. [5] 阿力同·其米克, 王青锋, 杨春锋, 等.新疆产药用植物黑果枸杞遗传多样性的ISSR分析[J].植物科学学报, 2013, 31(5):517-524. ALITONG Qimike, WANG Qingfeng, YANG Chunfeng, et al. ISSR analysis on genetic diversity of medically important Lycium ruthenicum Murr. in Xinjiang[J]. Plant Sci J, 2013, 31(5):517-524. [6] LIU Zenggen, SHU Qingyan, WANG Lei, et al. Genetic diversity of the endangered and medically important Lycium ruthenicum Murr. revealed by sequence-related amplified polymorphism (SRAP) markers[J]. Biochem Syst Ecol, 2012, 45:86-97. [7] GUO Qi, GUO Lili, ZHANG Lin, et al. Construction of a genetic linkage map in tree peony (Paeonia Sect. Moutan) using simple sequence repeat (SSR) markers[J]. Sci Hortic, 2017, 219:294-301. [8] WANG Long, LI Xiugen, WANG Lei, et al. Construction of a high-density genetic linkage map in pear (Pyrus communis×Pyrus pyrifolia Nakai) using SSRs and SNPs developed by SLAF-seq[J]. Sci Hortic, 2017, 218:198-204. [9] SUNGIRAI M, BARON S, van der MERWE N A, et al. Population structure and genetic diversity of Rhipicephalus microplus in Zimbabwe[J]. Acta Trop, 2018, 180:42-46. [10] REBAA F, ABID G, AOUIDA M, et al. Genetic variability in Tunisian populations of faba bean (Vicia faba L. var. major) assessed by morphological and SSR markers[J]. Physiol Mol Biol Plant, 2017, 23(2):397-409. [11] LI Zhigang, CHEN Feng, HUANG Chunhua, et al. Genome-wide mapping and characterization of microsatellites in the swamp eel genome[J]. Sci Rep, 2017, 7(1):3157. [12] AMBREEN H, KUMAR S, VARIATH M T, et al. Development of genomic microsatellite markers in Carthamus tinctorius L. (safflower) using next generation sequencing and assessment of their cross-species transferability and utility for diversity analysis[J]. PLoS One, 2015, 10(8):e0135443. [13] 鄢秀芹, 鲁敏, 安华明.刺梨转录组SSR信息分析及其分子标记开发[J].园艺学报, 2015, 42(2):341-349. YAN Xiuqin, LU Min, AN Huaming. Analysis on SSR information in transcriptome and development of molecular markers in Rosa roxburghii[J]. Acta Hortic Sin, 2015, 42(2):341-349. [14] 宗宇, 王月, 朱友银, 等.基于中国樱桃转录组的SSR分子标记开发与鉴定[J].园艺学报, 2016, 43(8):1566-1576. ZONG Yu, WANG Yue, ZHU Youyin, et al. Development and validation of SSR markers based on transcriptomic data of Chinese cherry (Prunus pseudocerasus)[J]. Acta Hortic Sin, 2016, 43(8):1566-1576. [15] 巩檑, 程永芳, 甘晓燕, 等.马铃薯转录组EST-SSR挖掘及其多样性分析[J].分子植物育种, 2015, 13(7):1535-1544. GONG Lei, CHENG Yongfang, GAN Xiaoyan, et al. Mining EST-SSR based on potato transcriptome and analyzing their polymorphism[J]. Mol Plant Breed, 2015, 13(7):1535-1544. [16] CHEN Jinhuan, ZHANG Dongzhi, ZHANG Chong, et al. Physiological characterization, transcriptomic profiling, and microsatellite marker mining of Lycium ruthenicum[J]. J Zhejiang Univ-Sci B Biom Biotechnol, 2017, 18(11):1002-1021. [17] GRABHERR M, HAAS B J, YASSOUR M, et al. Full-length transcriptome assembly from RNA-Seq data without a reference genome[J]. Nat Biotechnol, 2011, 29(7):644-652. [18] 樊文强, 盖红梅, 孙鑫, 等. SSR数据格式转换软件DataFormater[J].分子植物育种, 2016, 14(1):265-270. FAN Wenqiang, GAI Hongmei, SUN Xin, et al. DataFormater, a software for SSR data formatting to development population genetic analysis[J]. Mol Plant Breed, 2016, 14(1):265-270. [19] LIU Kejun, MUSE S V. PowerMarker:an integrated analysis environment for genetic marker analysis[J]. Bioinformatics, 2005, 21(9):2128-2129. [20] BOTSTEIN D, WHITE R L, SKOLNICK M, et al. Construction of a genetic linkage map in man using restriction fragment length polymorphisms[J]. Am J Human Genet, 1980, 32(3):314-331. [21] 尹跃, 安巍, 赵建华, 等.枸杞种质资源遗传多样性的iPBS分析[J].福建农林大学学报(自然科学版), 2017, 46(6):612-617. YIN Yue, AN Wei, ZHAO Jianhua, et al. Genetic diversity analysis of wolfberry germplasm using iPBS makers[J]. J Fujian Agric For Univ Nat Sci Ed, 2017, 46(6):612-617. [22] 黄耀辉, 张超, 周莉花, 等.基于转录组序列的夏蜡梅SSR位点特征与引物开发[J].浙江农林大学学报, 2017, 34(4):589-596. HUANG Yaohui, ZHANG Chao, ZHOU Lihua, et al. Development and primer screening of SSR markers based on transcriptome sequences in Sinocalycanthus chinensis[J]. J Zhejiang A & F Univ, 2017, 34(4):589-596. [23] 梅利那, 范付华, 崔博文, 等.基于马尾松转录组的SSR分子标记开发及种质鉴定[J].农业生物技术学报, 2017, 25(6):991-1002. MEI Lina, FAN Fuhua, CUI Bowen, et al. Development of SSR molecular markers based on transcriptome sequences and germplasm identification in Masson pine (Pinus massoniana)[J]. J Agric Biotechnol, 2017, 25(6):991-1002. [24] 郑如玉, 刘坤, 杨杞, 等.中间锦鸡儿干旱转录组SSR标记的开发及遗传多样性研究[J].分子植物育种, 2017, 15(6):2236-2243. ZHENG Ruyu, LIU Kun, YANG Qi, et al. SSR marker development and the genetic diversity of Caragana intermedia in based on transcriptome under drought stress[J]. Mol Plant Breed, 2017, 15(6):2236-2243. [25] 张庆田, 李晓艳, 杨义明, 等.蓝靛果忍冬转录组SSR信息分析及其分子标记开发[J].园艺学报, 2016, 43(3):557-563. ZHANG Qingtian, LI Xiaoyan, YANG Yiming, et al. Analysis on SSR information in transcriptome and development of molecular markers in Lonicera caerulea[J]. Acta Hortic Sin, 2016, 43(3):557-563. [26] 李娜, 姚民, 梅兰菊, 等.基于山桐子转录组序列的SSR分子标记开发[J].应用与环境生物学报, 2017, 23(5):952-958. LI Na, YAO Min, MEI Lanju, et al. Development of SSR molecular markers based on transcriptome sequencing of Idesia polycarpa Maxim[J]. Chin J Appl Environ Biol, 2017, 23(5):952-958. [27] 李海波, 王珊, 丁红梅, 等.普通油茶转录组EST-SSR分子标记开发[J].植物生理学报, 2017, 53(7):1267-1278. LI Haibo, WANG Shan, DING Hongmei, et al. Development of EST-SSR molecular markers based on transcriptome sequencing of Camellia oleifera[J]. Plant Physiol J, 2017, 53(7):1267-1278. [28] 方智振, 叶新福, 周丹蓉, 等. '芙蓉李'转录组SSR信息分析与分子标记开发[J].果树学报, 2016, 33(4):416-424. FANG Zhizhen, YE Xinfu, ZHOU Danrong, et al. Analysis on SSR information in 'Furongli' plum transcriptome and development of molecular markers in Prunus salicina Lindl.[J]. J Fruit Sci, 2016, 33(4):416-424. [29] ZHONG Ruichun, ZHOU Meili, ZHAO Chuanzhi, et al. SSR marker development from peanut gynophore transcriptome sequencing[J]. Plant Breed, 2016, 135(1):111-117. [30] LIU Touming, ZHU Siyuan, FU Lili, et al. Development and characterization of 1, 827 expressed sequence tag-derived simple sequence repeat markers for ramie (Boehmeria nivea L. Gaud)[J]. PLoS One, 2013, 8(4):e60346. [31] CLOUTIER S, NIU Zhixia, DATLA R, et al. Development and analysis of EST-SSRs for flax (Linum usitatissimum L.)[J]. Theor Appl Genet, 2009, 119(1):53-63. -
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